Исследование кролика

Внутренние незаразные болезни животных — одна из ведущих, профилирующих клинических дисциплин, формирующих ветеринарного врача, и первым предметом, вводящим студента в клинику, является пропедевтика (основы диагностики) внутренних болезней.

Цели этой дисциплины следующие:

  • научить физическим методам исследования и рациональному подходу к больному животному;
  • познакомить с основными симптомами и синдромами (сочетание симптомов, имеющих единое происхождение), встречающимися при заболеваниях внутренних органов;
  • познакомить с основами диагностики наиболее часто встречающихся болезней.
  • Анализируя проявления заболевания, которые могут быть одинаковыми при различных видах патологии, студент учится находить признаки, которые позволяют с большей или меньшей степенью вероятности поставить правильный диагноз.

    В связи с этим обучение основам диагностики (пропедевтика) внутренних болезней приобретает особое значение. Термин “пропедевтика” происходит от греч., что означает “подготовка”, “введение”.

    Существующие подходы к обследованию больного имеют цель выработать у врача навык к определенной последовательности и особенно полноте в изучении больных животных. В основе их лежат принципы от общего к частному, от более поверхностного к более глубокому, от более простого к более сложному.

    Последовательность предусматривает обследование больного, начиная с кожных покровов и слизистых оболочек, затем подкожной жировой клетчатки, лимфатических узлов, опорно-двигательного аппарата (суставы, кости, мышцы), и только потом исследуют системы дыхания, кровообращения, пищеварения, гепатобилиарную, мочевыделения, эндокринную, нервную, органы чувств. При этом каждый орган или система изучаются в определенной последовательности. При изучении каждой системы вначале врач использует более простые физические методы — расспрос, осмотр, далее более сложные — ощупывание (пальпация), выстукивание (перкуссия), выслушивание (аускультация).

    Таким образом, итог многоэтапного диагностического поиска, а главное, попытки понять механизмы возникновения обнаруженных клинических признаков и их связь с факторами внутренней и окружающей больного животного среды, представить всю сложную систему изменений в ответ на действие этих факторов по существу соответствует тому представлению о болезни, которое дается ведущими клиницистами. Одно из наиболее полных определений болезни принадлежит Е.М. Тарееву: “Болезнь — это реакция организма на изменившиеся условия среды, нарушение конкретных форм приспособляемости организма. Именно взаимодействие среды и организма с его меняющейся реактивностью и должно всегда учитываться при суждении о причине, происхождении любой болезни”.

    В процессе самостоятельных занятий в условиях клиники студенты должны провести исследование больного животного и на основании полученных данных оформить его историю болезни. В последующем выясняют патогенез болезни, форму течения, прогноз, назначают и проводят лечение. Во время работы студент использует настоящие методические указания, рекомендованную литературу и может воспользоваться консультацией преподавателя и врача-ординатора.

    СХЕМА КЛИНИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

    Клиническое исследование животных проводится в следующей последовательности.

    Записывают вид, пол, породу, возраст, кличку, инвентарный номер, продуктивность, приметы животного, Ф.И.О. владельца и его адрес.

    Anamnesis vitae — время нахождения животного в хозяйстве, (в доме владельца), характеристика помещения, условия содержания, кормления, водопоя, степень физической активности.

    Anamnesis morbi — сведения о ранее перенесенных болезнях и их течении, санитарном и эпизоотическом состоянии хозяйства (административного округа, района), диагностических исследованиях животного, первоначальные симптомы отмечаемого заболевания, время и обстоятельства их проявления, кем, когда и как проведены первые и профилактические мероприятия, включая данные о наследственности.

    В спокойном состоянии животного исследуют показатели температуры ( 0С ), частоты пульса (уд/мин.) и дыхания (в 1 мин.) и обозначают цифрами.

    Габитус – состояние животного в момент его исследования.

    Телосложение: крепкое, среднее, слабое.

    Конституция: грубая, нежная, плотная, рыхлая.

    Упитанность: хорошая, удовлетворительная, неудовлетворительная, истощение, ожирение.

    Положение тела: добровольно-физиологическое активное, пассивное (стоячее или лежачее), вынужденное (стоячее или лежачее), а также необычные позы, принимаемые животными, непроизвольные вынужденные движения с их характеристикой.

    Темперамент: живой, инертный, тип нервной деятельности.

    Нрав: добрый, злой.

    Кожа– волосяной покров: блестящий, матовый, волос удерживается прочно или слабо, прилегающий или взъерошен, густой или редкий, наличие участков облысения, сечения; равномерность, линька.

    Эластичность: сохранена, понижена или потеряна.

    Тургор кожи: сохранен, понижен, потерян.

    Подкожная клетчатка: степень развития (удовлетворительная, слабая, чрезмерная), места наибольшего отложения жира, общее ожирение, исхудание, кахексия.

    Влажность: умеренная, чрезмерно сухая, влажная, общая или местная потливость, асимметрия потоотделения.

    Запах: специфический, неспецифический (характер и интенсивность).

    Цвет: нормальный – указать оттенок, бледность, покраснение, синюшность, желтушность (общая или местная с описанием локализации и интенсивности), цианотичность, темно-коричневый, локализация патологической пигментации, гиперемия, петехии, экхимозы.

    Болезненность: отсутствует, общая или местная боль и ее локализация.

    Целостность: не нарушена или нарушена в виде потертостей, ушибов, струпов, ссадин, ран, трещин, язв, пролежней, рубцов, расчесов, струпов, бородавок с указанием места локализации и величины; пятна, эритема, кровоизлияния наличие пузырьков, волдырей, узелков, розеол, чешуек, папул, пустул их форма, цвет, распространение, величина.

    Температура: общая или местная, без повышения, повышена, понижена.

    Воспалительные процессы кожи и подкожной клетчатки: гиперемия, припухание (ограниченное или разлитое), боль, локализация.

    Отеки: (головы, конечностей, живота) — отсутствуют, наличие и их локализация (застойные, воспалительные, кахектические, почечные), подкожная эмфизема, слоновость кожи; общие отеки, их постоянство, время появления, исчезновения.

    Наличие паразитов: блохи, вши, власоеды, пухопероеды (для птицы).

    Эпидермис кожи: сухой, влажный, шелушится, зоны шелушения и место их локализации.

    Лимфатические узлы – подчелюстные, предлопаточные, коленной складки, надвымянные, паховые.

    Величина: не увеличены, увеличены, уменьшены.

    Подвижность: подвижны или неподвижны.

    Консистенция: упругие, плотные, мягкие.

    Болезненность: безболезненные, болезненные.

    Местная температура: не повышена, повышена, понижена.

    Слизистые оболочки – конъюктива, слизистые носа, ротовой полости, влагалища.

    Цвет: бледно-розовый, розовый, цианотичный, фарфоровый, желтушность, покраснение, синюшность и их оттенки, пятна, пигментация естественная, патологическая или отсутствует.

    Влажность: умеренно влажные, сухие, при наличии истечений – их характер.

    Целостность: сохранена или нарушена, раны, ссадины, афты, наложения, узелки, рубцы, новообразования.

    Отечность: не отечная, отечная, место локализации.

    • ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЬНЫХ СИСТЕМ

    Сердечно – сосудистая система

    Осмотр и пальпация области сердца: болезненность сердечной области или отсутствие ее, величина площади сердечного толчка, смещаемость и смещение сердечного толчка; сердечный толчок – просматривается или не просматривается, по силе – умеренный, стучащий, усиленный, ослабленный, по характеру – диффузный (разлитой) или ограниченный (локализованный).

    Перкуссия области сердца : границы абсолютной или относительной сердечной тупости (притупления) – верхняя и задняя в цифрах с указанием межреберья или ребра, увеличение или уменьшение относительной сердечной тупости, болезненность или отсутствие ее.

    Аускультация области сердца: характер сердечных тонов – усиленные, ослабленные, чистые, оба или один умеренные, удлиненные; их ясность; изменения в виде глухости, расщепления, раздвоения, ритма галопа; акценты.

    Отсутствие или наличие шумов:

    Эндокардиальных — функциональные, органические, систолические, диастолические (отношение шумов к фазам сердечной деятельности; характер шумов; дующий, свистящий, скребущий, пилящий, музыкальный; интенсивность шумов; места выслушивания шумов наибольшей интенсивности; изменение шумов при перемене положения тела, до и после физической нагрузки).

    Экстракардиальных — перикардиальные, плевроперикардиальные, кардиопульмональные.

    Пульс и артерии: ритмичный или аритмичный; характеристика аритмий.

    по напряжению кровеносных сосудов – нормальный, твердый, жесткий, мягкий;

    по наполнению – полный, средний, пустой, умеренный;

    по величине пульсовой волны – нормальный, большой, средний, малый, нитевидный;

    по форме спадения волны – нормальный, умеренно спадающий, медленный, скачущий, альтернирующий, ложноальтернирующий, дикротический; состояние артериальной стенки, болезненность артерий при пальпации.

    Вены: по эластичности – эластичные или уплотненные, пульсация яремных вен, наличие или отсутствие колебаний и пульса – отрицательного (физиологического), положительного (систолического); ундуляция; уплотнение, узловатость, болезненность вен.

    Коллатеральное и варикозное расширение вен (грудной клетки, брюшной стенки, конечностей).

    Исследование верхнего отдела дыхательных путей

    Носовая полость: состояние отверстий носа, их контур, сужение или расширение, движение крыльев носа; вдох, выдох свободный, затруднен; истечения и их консистенция – серозные, слизистые, гнойные, смешанные, цвет – бесцветный, прозрачный, белый, красноватый, шафранно-желтый и др., запах – без запаха, гнилостный, с примесями воздуха, крови, количество – обильное, умеренное, скудное, незначительное, постоянное или периодическое; кровотечение из носа – отсутствует, одностороннее, двустороннее, обильное, скудное, длительное; кровь пенистая, алая, голубоватая, свернувшаяся, не свернувшаяся.

    Придаточные полости черепа — гайморовы, лобные,воздухоносные мешки у лошади:конфигурация, болезненность, плотность костей, температура кожи местная, характер перкуторного звука, величина и напряженность мешка.

    Гортань и трахея: наличие травм, припухлостей, инфильтрации, деформации, чувствительность, болезненность, безболезненность, местная температура, шумы, изменение голоса. Кашель – отсутствует, имеется, его характеристика: чистый, редкий, приступообразный, болезненный, сухой, влажный и момент его появления – при движении, в покое, на свежем воздухе, в помещении, в период приема корма; продолжительность кашлевого толчка.

    Одышка: отсутствует или имеется, при наличии ее определить тип – инспираторная, экспираторная, смешанная, постоянная или периодическая в покое, после нагрузки, при движении.

    Тип дыхания: грудобрюшное, грудное (костальное), брюшное (абдоминальное).

    Ритм дыхания: ритмичное, саккадированное (прерывистое), дыхание Чейна-Стокса, Биота, диссоциированное дыхание Грокка, большое дыхание Куссмауля.

    Глубина дыхания: умеренная, глубокая, поверхностная.

    Симметричность: симметричное или асимметричное.

    Исследование грудной клетки

    Форма грудной клетки: (нормально-физиологическая, широкая, узкая, плоская, эмфизематозная – бочковидная; цилиндрическая); целостность, чувствительность, болезненность, сила и симметричность дыхательных движений – при глубоком и спокойном дыхании; положение лопаток – нормальное прилегание, отставление их в стороны в покое и при движении.

    Деформация грудной клетки – лордоз, кифоз, сколиоз, кифолордоз;

    Пальпация грудной клетки – состояние ребер, межреберных мышц, рахитические четки, болезненность.

    Перкуссия грудной клетки: определяют границы слева и справа по двум линиям у крупного рогатого скота, по трем у лошадей, собак, свиней; отмечают изменение границ легких; характер перкуторного звука — ясный легочной – атимпанический, тимпанический, коробочный, металлический, звук треснувшего горшка; ясный, тупой, притупленный, высокий, низкий; продолжительный, короткий с указанием места локализации и границ; отклонения в звуках с указанием их размера и границ.

    Аускультация грудной клетки: тип дыхания – везикулярное, нежное везикулярное, усиленное везикулярное, бронхиальное; наличие и характер шумов – бронхопульмональные (патологическое бронхиальное, амфорическое, экстрапульмональные (шумы плеска, трения, легочной фистулы) с указанием месторасположения каждого шума.

    Хрипы – локализация; количество; характер и сила звучности: высокого, низкого тона, шипящие, музыкальные, свистящие; влажные мелко-, средне-, крупнопузырчатые; субкрепитирующие, крепитирующие.

    Как организовать дистанционное обучение во время карантина?

    Помогает проект «Инфоурок»

    Городская научно-практическая конференция

    Исследование Новых условий содержания кроликов на станции юных натуралистов города Усолье — Сибирское

    Выполнила: Обучающаяся детского объединения

    МОУ ДОД «СЮН» «Удивительный мир зоологии»

    Балановская Елена Владиславовна

    педагог дополнительного образования

    Киселева Татьяна Валентиновна

    г. Усолье-Сибирское 2012 год

    Характеристика влияния различных факторов влияющих на развитие молодых кроликов—————————————————————

    Кролиководство – перспективная отрасль животноводства. Кролиководство дает вкусное диетическое мясо, ценное меховое сырье и пух, при кормлении кроликов используются дешевые и доступные корма. Для успешного ведения кролиководства необходимо хорошо знать требования животных к отдельным факторам среды, уметь управлять совокупностью этих факторов.

    Особенно отзывчив организм кролика на хорошее кормление. Правильное и рациональное кормление оказывает решающее влияние на здоровье животных и качество получаемой от них продукции.

    Содержание животных и уход за кроликами тоже играет немаловажную роль в выращивании продуктивного молодняка. Плохой уход может повлиять на воспроизводительные качества развивающего молодняка.

    Наблюдения я и опыты по кролиководству должны способствовать глубокому изучению биологии этих животных, освоению техники их кормления и содержания.

    Цель моих исследований – Выяснить, как зависит развитие организма кролика от внешних условий. Показать, что человек может заметно повлиять на организм животного, улучшая его состояние.

    В задачи исследований входило: Экспериментально доказать какие внешние условия целесообразно использовать для получения более продуктивных, крепких и здоровых животных:

    1.Определить среднесуточный и абсолютный прирост живой массы кроликов при кормлении кроликов, с использованием отвара хвои.

    2. Провести наблюдения за аппетитом и темпераментом кроликов при подвижном образе жизни.

    3. Изучить изменение состояния шерсти животных при понижении температуры содержания.

    Впервые, в условиях станции юных натуралистов на кроликах различных пород проведены опыты, в которых изучено влияние разнообразия корма, температуры содержания, подвижного образа жизни на рост и развитие молодняка кроликов.

    Практическая ценность работы.

    Проведенные исследования дают возможность кролиководам использовать полученные результаты для работы не только с кроликами исследованных пород, но и с кроликами других пород.

    1.Выростить более крепких, здоровых и закаленных животных.

    2.Сократить сроки роста молодняка.

    4. Уменьшить падеж животных в раннем возрасте.

    5. При разведении пуховых пород улучшить качество пуха и шерсти.

    6. При разведении мясных пород увеличить мясную продуктивность.

    Существуют многочисленные внешние факторы оказывающие влияние на развитие организма кролика. В данной работе я изучаю только некоторые из них, такие как: влияние разнообразного кормления, включающего в себя все необходимые для развития вещества, влияние подвижного образа жизни и влияние температуры.

    1.1.Оценки развития организма кроликов

    Для того чтобы определить как воздействуют те или иные внешние условия на развития организма животных обычно используют оценку внешнего вида животных. Оценка размеров и живого веса также имеют большое значение, как показатели роста и развития кроликов. Совокупность этих показателей определяет конституцию кроликов. Иначе говоря, в конституции отражены все анатомо-физиологические особенности организма, связанные с характером продуктивности и способностью реагировать на условия внешней среды.

    Конституцию кроликов оценивают, прежде всего, по внешнему виду — экстерьеру. Внешний вид дает представление о конституциональной крепости, направлении продуктивности и здоровье кролика.

    При оценке кролика, прежде всего, обращают внимание на его телосложение в целом, а также определяют качество его кожного покрова. Оценку телосложения (экстерьера) начинают с головы, затем переходят к определению обхвата груди, ширины поясницы, длины корпуса. Кроликам каждой породы присуща определенная форма головы. У самцов голова бывает несколько массивнее, грубее, чем у самок. Длина и форма ушей также служит признаком породы, но у всех животных они должны быть прямыми, плотными у основания.

    Оценивают кроликов по экстерьеру глазомерно (осмотром внешнего вида), а также по результатам их измерений и взвешивания. Измерение и взвешивание кроликов (дополнение к глазомерной оценке) позволяют получить данные для более объективной характеристики каждого животного. Обычно, для определения размеров кролика достаточно двух основных промеров: длины тела и обхвата груди за лопатками. Берут следующие промеры: обхват груди за лопатками, длина тела (от кончика носа вдоль шеи, спины, поясницы, крупа до корня хвоста) и длина корпуса (от первого грудного позвонка до корня хвоста). В кролиководстве в основном определяют по размерам индекс сбитости. Этот индекс — хороший показатель развития массы тела кроликов.

    Читайте так же:  Как делается клетки для кроликов

    При оценке кроликов большое значение имеет их живая масса, определяют ее взвешиванием животных до кормления, с точностью до 50—100 г.

    Широкая и глубокая грудь — показатель хорошего здоровья и крепости конституции. Узкая грудь свидетельствует о слабости конституции животного. Желательно, чтобы спина и поясница были ровные, прямые и широкие, мышцы должны быть твердыми и плотными по всему корпусу (особенно на боках и вдоль поясницы).

    В кролиководстве применяют две классификации типов конституции. Согласно первой принято разделять животных на два основных типа: лептосомный и эйрисомный. У животных первого типа узкий скелет, удлиненная грудная клетка, небольшая голова на длинной шее. Обмен веществ у них повышен. Животные, принадлежащие к эйрисомному типу, характеризуются массивным туловищем, сильным развитием жирового слоя, объемистой грудью, короткой мускулистой шеей. У них пониженный обмен, склонность к отложению жира и образованию мяса. К широкотелым (эйрисомным) относятся кролики пород советская шиншилла, серебристый и др. К узкотелым (лептосомным) — серый великан, белый пуховый и др.

    В пределах каждого основного типа (эйрисомного и лептосомного) встречаются кролики грубой, крепкой, рыхлой и нежной конституций. Авторами данной классификации типов конституции были профессора: П. Н. Кулешов, Е. А. Богданов и М. Ф. Иванов.

    Конституция животного определяет все особенности строения организма и его функции, обусловленные наследственной основой и условиями его обитания. Знание конституции дает возможность совершенствовать организм животного в нужном для человека направлении

    Влияние на организм кроликов такого фактора внешней среды как кормление

    При выращивании кроликов на рационах, различающихся по содержанию белка и концентратов, наблюдаются существенные изменения в соотношении отдельных частей скелета. У животных, не получавших концентратов и содержащихся на рационах с пониженным уровнем белка, обнаружилось недоразвитие костей задних конечностей (имеют небольшую энергию роста в послеутробный период) и в меньшей степени — костей черепа (имеют наименьшую энергию роста в послеутробный период).

    Корма должны содержать все необходимые компоненты: белки, жиры, углеводы, витамины и минеральные вещества.

    Белки входят в состав всех органов и тканей и не могут быть заменены другими веществами. В процессе пищеварения они распадаются на аминокислоты, которые по своему значению для организма животного отличаются друг от друга. Качество белка зависит от набора кислот, входящих в его состав.

    Например, отсутствие лизина задерживает образование молока, цистин и метионин требуются для нормального роста волосяного покрова, триптофан — для развития молодняка и т. д. Недостаточное содержание белка в рационе приводит к понижению плодовитости. Белки растительного происхождения бедны незаменимыми аминокислотами и называются неполноценными.

    Полноценные белки содержатся в кормах животного происхождения: молоке, мясо — костной, рыбной муке и др. При составлении рационов корма следует подбирать так, чтобы недостаток белков в одном корме пополнялся наличием их в другом.

    Жиры служат источником тепла и энергии в организме. Основные корма для кроликов содержат незначительное количество жира. В семенах ржи и пшеницы его находится 1—2%, кукурузе и овсе —5—6, корнеплодах — до 1%. Много жира в семенах льна, подсолнечника и других масличных культурах (30—40%). Включение в рацион кормов, богатых жирами, оказывает положительное влияние на продуктивность животных (особенно при откорме) и качество волосяного покрова.

    Углеводы в организме кролика содержатся в виде виноградного сахара в крови и гликогена в печени и являются также источником тепловой энергии. Важную роль при этом играют крахмал и сахар. Из углеводов в организме образуются жиры. Большое количество углеводов — в растительных кормах. Крахмал содержится в семенах, клубнях и плодах. Сахаром богата сахарная свекла, морковь, арбузы, тыква и сочные плоды.

    Клетчатка плохо переваривается, поэтому кроликам нецелесообразно скармливать солому и перестоявшую огрубевшую траву. Увеличенное содержание клетчатки в корме (более 20%) ухудшает питательность рациона в целом. Однако пониженное содержание клетчатки в рационе (менее 9%) отрицательно сказывается на здоровье и продуктивности животных, так как при этом нарушаются процессы пищеварения.

    Вода входит в состав тела кроликов, на ее долю приходится 2/3 живой массы и свыше 80% крови. Взрослому кролику требуется около 1 л воды (для поения), молодняку —0,3 л. Недостаток воды в организме приводит к ухудшению роста молодняка, нарушению его жизнедеятельности и заболеванию животных. Потребность кроликов в воде зависит от возраста животного, состава рациона, физиологического состояния и температуры окружающей среды. В период лактации самке необходимо жидкости на 20% больше, чем холостой. При отсутствии воды во время окрола самка может съесть приплод.

    В зимний период рекомендуется давать подогретую воду (до 40— 50С). Поить кроликов следует минимум 2 раза в сутки: утром и вечером. При скармливании травы и сочных кормов потребность в воде сокращается. Нельзя выпаивать кроликам воду незадолго до скармливания зеленых кормов или вскоре после него, так как это может вызвать тимпанию (вздутие желудка).

    Минеральные вещества — кальций, фосфор, марганец, калий, кобальт, магний, натрий, хлор, цинк, железо и медь—необходимы для нормальной жизнедеятельности организма. Они входят в состав клеток тела животного и принимают участие во всех физиологических процессах (пищеварении, газообмене и т. д.), происходящих в организме. Особо важную роль играют кальций и фосфор. Недостаток их у самок приводит к нарушениям развития зародышей, нормального развития костяка, отставанию в росте крольчат. Потребность в минеральных веществах повышается у беременных и лактирующих самок. Источники фосфора: мясо-костная, рыбная мука, трава, сено и зерновые отходы.

    Кальцием богаты бобовые растения, немного его содержится в сене, соломе злаков и сухом веществе корнеплодов. Кролики должны получать в течение всего года поваренную соль. Недостаток соли вызывает снижение усвояемости кормов, энергии роста молодняка и молочности самок.

    Для нормальной жизнедеятельности организма кроликов требуется сера (имеется в кормовой капусте), железо (содержится в травяной и рыбной муке, крапиве и салате), йод, кобальт, калий, марганец, магний, фтор, цинк, селен, которые находятся в микродозах в различных кормах.

    Витамины — вещества, крайне необходимые для жизнедеятельности организма животных. Недостаток витамина А (каротина) обусловливает у кроликов замедление роста, поражение нервной системы, ксерофтальмию и нарушение воспроизводительной способности. Провитамин А содержится в растительных кормах: в цветах и листьях растений, моркови, тыкве, силосе, хорошем сене.

    Для нормального развития костяка требуется витамин D. При его недостатке у молодняка наблюдается рахит, а у взрослых животных остеомаляция (размягчение костей). Много витамина D в рыбьем жире, но он может образоваться в организме из провитамина под действием ультрафиолетовых лучей.

    Витамин Е поддерживает функцию органов размножения. Недостаток его вызывает мышечную дистрофию, задержку спермообразования, рассасывание эмбрионов, а также жировое перерождение печени. Содержится он в ростках зерен, зеленых кормах, люцерновом сене, растительных жирах.

    Витаминами группы В организм пополняется при потреблении зерен злаковых и бобовых, травы, отрубей, корнеклубнеплодов и дрожжей. При поедании мягкого кала (капрофагия), чрезвычайно богатого витаминами В, кролики также частично или полностью удовлетворяют свою потребность в этих витаминах за счет деятельности микрофлоры желудочно-кишечного тракта. Недостаток витамина РР (никотиновая кислота) приводит к поражению кожи и слизистой рта, нервному раздражению, расстройству пищеварения. Содержится он в отрубях, овсе, ячмене, мясной муке, моркови.

    При отсутствии витамина Н (биотина) отмечается заболевание кожи (дерматит). Имеется витамин в моркови, горохе, капусте, зеленых кормах

    Полезны для улучшения пищеварения ветки березы, осины, тополя, ивы или вербы, вяза, дуба, ясеня, клена. Желательно за раннее запастись этими кормами на зиму, для чего с начала августа следует нарезать свежие ветки с листьями и тщательно просушить их в тени. После первых морозов в корм кроликам можно использовать ветки сосны и ели. Ветки можно заготавливать и зимой. С таких веток кролики поедают кору, хвою и молодые побеги.

    1.3.Влияние на организм кроликов такого фактора внешней среды как подвижный образ жизни

    Нынешнее кролиководство, основано на содержании в тесных клетках, уже одним этим отличается от других отраслей животноводства. В зоотехнии есть правило — продуктивность животного зависит не только от кормления, но и от того, как удовлетворяются другие его природные потребности, и особенно двигательная активность — самая естественная потребность живого существа. Выгон или выгульный дворик, площадка, дорожка — ныне неотъемлемая принадлежность всякой грамотной фермы, ведь отсутствие движения — это нарушение работы сердца, пищеварения, обмена веществ и, как результат, пониженная его продуктивность и выживаемость.

    «Содержать кроликов можно в клетках или на свободе, в огороженном дворике. При рационально поставленном хозяйстве последний способ наилучший, и нет ничего красивее и интереснее, как вольера с кроликами, в особенности когда они играют и резвятся». В. В. Сабинецкий «Кролик», 1906 г.

    Для успешного развития необходимо время от времени предоставлять кроликам возможность порезвиться и поскакать.

    А теперь выдержки из журналов «Социалистическое кролиководство» и «Кролиководство» начала 30-х гг.

    «Клетка вынуждает кролика, чистоплотного по своей природе, испражняться около своей кормушки, пачкаться и вечно дышать запахом навоза, что способствует заболеваниям. Выгул в кролиководстве имеет колоссальное значение.

    Замечено: чем большим простором пользуются животные, тем они здоровее.

    Надо полагать; хороший кроликовод всегда найдет возможность выгула для своих кроликов тем или иным способом.

    3.Влияние на организм кроликов такого фактора внешней среды как температура

    Большое влияние на развитие организма кроликов оказывают и климатические условия. Так, крольчата, родившиеся в январе, имеют более высокую живую массу, чем крольчата того же возраста, но родившиеся в марте. Кролики, родившиеся осенью и зимой, отличались более густым волосяным покровом по сравнению с кроликами, родившимися летом. У кроликов зимних окролов был густой волосяной покров, шкурка их созревала к 4—5 месяцам. При изучении показателей роста и развития кролики зимних и весенних окролов сходны, молодняк же летних окролов (особенно родившиеся в жаркое время) развивается хуже.

    В зависимости от температуры воздуха меняется и температура тела кролика: при 5° она равна 37,5, при 10″ — 38, при 30—35° — 40,5°, при повышении температуры воздуха до 43° наблюдается перегрев организма кроликов, и если не принять мер к охлаждению их, то кролики могут погибнуть. Наряду с этим кролики также чувствительны к раздражающим веществам, содержащимся в воздухе, эти животные испытывают особенную потребность в чистом воздухе.

    Кролики хорошо себя чувствуют при температуре 14-16 °С. Колебания температуры воздуха, особенно резкие, часто приводят к массовым простудным заболеваниям. Кроме того, пониженная температура воздуха влечет повышенный расход кормов, заметно

    снижает темпы роста животных. Температуру в крольчатнике определяют в точке, наиболее удаленной от отопительных систем, равно как и от холодных стен, дверей, окон.

    2.1. Методика исследований.

    Опыты проводился на базе живого уголка при станции юных натуралистов города Усолье — Сибирское. В эксперименте принимали участие 3 группы кроликов. Опыт проводился в течение 75 дней. Взвешивание кроликов проводилось на напольных весах с точностью до 50гр.

    Телосложение кроликов оценивали визуально по форме и величине головы, внешнему виду спины, крепости и постановке конечностей.

    Оценку телосложения кроликов проводят в соответствии с требованиями, указанными на схеме №1.

    Густота волосяного покрова у кроликов имеет очень большое значение как один из основных показателей здоровья и развития животного. Под густотой волосяного покрова понимают количество волос на единице площади кожи. В лабораторных условиях ее определяют подсчетом количества волос на какой-либо единице площади кожи с последующим пересчетом на 1 кв. см.

    В практических условиях применяют простой метод. На спине и боках кролика раздувают волосяной покров против направления роста волос. При этом образуется розетка и обнажается кожа.

    По величине обнаженной площади кожи (дна розетки) судят о густоте. ГОСТом 3214-46 установлена следующая оценка густоты волосяного покрова кроликов: очень хорошая густота — площадь дна розетки не видна, или должна быть не более 4 кв. мм (булавочной головки); хорошая густота — площадь дна розетки не должна превышать 8 кв. мм (спичечной головки); удовлетворительная густота — площадь дна розетки не больше 12 кв. мм (трех булавочных головок).

    Температуру в помещении, где находились исследуемые кролики, определяли в точке, наиболее удаленной от отопительных

    систем, равно как и от холодных стен, дверей, окон.

    В ходе опыта была произведена следующая работа:

    Для опыта «Влияние различного корма на развитие молодых кроликов» Мы брали 8 крольчат из одного помета. Отъем крольчат от матерей проводили в 45 дневном возрасте. Крольчат делили на две разные группы, взвешивали каждого отдельно, а затем определяли среднюю массу представителя каждой группы (взвешивали утром до первого кормления). Опыт продолжался 2,5 месяца. При постановки на опыт опытная группа крольчат получала разнообразные корма соответственно зимнему рациону, а также отвар хвои. Другую группу кормили зимним рационом без добавления отвара хвои. Живая масса крольчат определялась в 60, 90 и 120 дневном возрасте. Среднесуточный прирост живой массы определяли путем деления абсолютного прироста на продолжительность опыта в днях.

    Проведение опыта, согласно схеме, представленной в таблице 1.

    Для животных опытной и контрольной групп были созданы одинаковые условия ухода, содержания и кормления.

    На протяжении опыта с периодичностью в тридцать дней проводилась перевеска животных. Это делалось для того, чтобы проследить, как отвар хвои влияет на развитие молодняка. Влияние разнообразного корма на рост молодняка кроликов и повышение их живой массы можно увидеть из таблицы «Изменение живой массы кроликов в течение опыта».

    Читайте так же:  Белая слизь у кроликов

    Из таблицы видно, что при постановке на опыт кролики контрольной группы имели более высокую живую массу. Но уже в 60 дней кролики опытной группы весили на 600 граммов больше. Перевески, произведенные в 90 и 120 дней также показали, что применение отвара хвои в рационе кроликов способствует более интенсивному увеличению живой массы. Разница абсолютного прироста живой массы между контрольной и опытной группами при постановке на опыт составила +0,002 килограмма, в 60 дней -0,060 килограмма, в 90 дней -0,200 килограмма, в 120 дней -0,340 килограмма.

    Таким образом, в целом по эксперименту можно сделать следующие выводы. Применение отвара хвои в рационе молодняка кроликов оказали положительное влияние на прирост живой массы кроликов и увеличение среднесуточных привесов (Положительное влияние объясняется наличием в отваре хвои каротина (провитамина А)).

    Влияние температуры на развитие кроликов

    В крольчатнике на станции юных натуралистов декоративного кролика одного помета в возрасте 2 месяцев ежедневно на несколько часов выпускали на прогулку, а второго из этого же помета все время содержали в клетке. Кормили одинаково обильно и разнообразно.

    На протяжении опыта проводились наблюдения за поедаемостью кормов животными. Аппетит у кроликов оценивали по характеристике приема корма (энергичный, вялый, отказ от приема корма). Один раз в день учитывали несъеденные остатки концентратов, корнеплодов и грубых кормов. У опытного крольчонка аппетит сохранялся весь срок наблюдения (энергичный прием корма). У крольчонка контрольной группы, в некоторые дни был отмечен вялый прием пищи. В период опыта велось постоянное наблюдение за поведением животных. Было отмечено, что опытный крольчонок вырос более энергичным и подвижным. Он быстрее реагировали на дачу корма. Отличался живым темпераментом, более доброжелательно реагировали на присутствие людей.

    Двухмесячных декоративных крольчат одного помета разделили на две группы по 1 кролику и определили экстерьер и густоту шерсти кроликов каждой группы. Опыт проводился зимой 2,5 месяца. Одного кролика содержали в клетке, установленной в прохладном сарае при температуре плюс 10 -11. А другого – в зооуголке при комнатной температуре плюс 20.

    Кроликов обеих групп кормили одинаково, разнообразным кормами, соответственно зимнему рациону. Кролику содержащимся на холоде, в связи с большой отдачей тепла количество корма увеличивали , чтобы животное питались вдоволь. В течении двух с половиной месяцев вели наблюдения за развитием волосяного покрова и густоты пуха у кроликов обеих групп. Опыт показал, что воспитание на холоде не только закаляет животных, но и благотворно влияет на развитие волосяного покрова.

    Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Сидорова Клавдия Александровна, Веремеева Светлана Александровна

    В статье приведены результаты морфометрических исследований стенки желудка кролика ; определён характер корреляционных связей между показателями клеточного состава слизистой оболочки желудка кролика калифорнийской породы.

    Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — Сидорова Клавдия Александровна, Веремеева Светлана Александровна

    MORPHOMETRIC STOMACH EXAMINATIONS IN THE CALIFORNIAN RABBIT

    The results of morphometric stomach walls examinations in the rabbit are reported. The character of correlation interconnections between the indices of mucosa cell structure in the California rabbit has been determined.

    Текст научной работы на тему «Морфометрические исследования желудка кролика калифорнийской породы»

    ?Морфометрические исследования желудка

    кролика калифорниискои породы

    К.А. Сидорова, д.б.н., профессор,

    С.А. Веремеева, к.в.н, Тюменская ГСХА

    Для успешного развития кролиководства необходимо знать биологические особенности кролика, физиологические процессы его питания, то есть усвоения и использования питательных веществ рациона, что поможет кролиководам найти рациональный путь применения кормов и снижения затрат при выращивании животных [11-

    Цель исследования — выяснить гистологические особенности желудка кролика калифорнийской породы в норме и при применении кормовой добавки Био-Мос.

    Задача исследования — изучить строение стенки различных отделов желудка кролика в норме и при дополнительном применении Био-Мос.

    Материалом для исследования служили тушки от клинически здоровых самцов кроликов (убой в возрасте 4-х мес.). Животные контрольной группы получали основной рацион, состоящий из гранулированного комбикорма, рецепт которого разработан в хозяйстве и изготовлен на Тюменском мелькомбинате. Кролики опытной группы дополнительно к основному рациону получали кормовую добавку Био-Мос компании «АШесИ», предназначенную для повышения общей резистентности, увеличения продуктивности и сохранности кроликов (доза 2 г на один кг гранулированного комбикорма, с двухмесячного возраста).

    Для определения особенностей тканевого состава стенок желудка использовали гистохи-

    мические методы. Всего исследовано было 40 желудков. Фиксированные в растворе 5%-ного формальдегида кусочки желудка заливали в парафин по общепринятой методике [2].

    Кролики относятся к животным с однокамерным желудком (подковообразной формы, объёмом около 200 см3), питающимся растительными кормами.

    При морфометрическом исследовании покровно-ямочного эпителия слизистой оболочки желудка установлено, что в дне и теле между группами животных статистически значимых различий не обнаружено, а в пилорической части показатели глубины, ширины желудочной ямки и высоты клеток эпителия у кроликов опытной группы были выше, чем в контрольной группе, соответственно на 6,1; 4,6 и 6,8%. Различия небольшие, но они статистически значимы (табл. 1). Поэтому можно сделать вывод о положительном влиянии кормовой добавки на структурно-функциональное состояние покровно-ямочного эпителия слизистой оболочки желудка кролика.

    Морфометрическое исследование желёз слизистой оболочки желудка животных контрольной и опытной групп выявило наличие статистически значимых различий по объёмной плотности желёз, по количеству главных и слизистых клеток в железах (табл. 2).

    У животных опытной группы объёмная плотность желёз была выше на 11,7% и больше количество главных клеток на 18,9%, но меньше слизистых клеток на 27,7%, чем у животных контрольной группы (табл. 2). Это также свидетельствует о влиянии кормовой добавки на

    1. Морфометрические показатели покровно-ямочного эпителия слизистой оболочки желудка кроликов калифорнийской породы контрольной и опытной групп, M±s

    Дно и тело желудка

    Глубина желудочной ямки, мкм 100,4±12,7 106,5±10,2

    Ширина желудочной ямки, мкм 32,4±2,8 29,8±5,4

    Высота клеток эпителия, мкм 22,1±1,8 23,4±2,5

    Ширина клеток эпителия, мкм 7,2±0,9 7,4±0,8

    Общая численная плотность клеток эпителия, на 1 мм 131±15 127±17

    Пилорическая часть желудка

    Глубина желудочной ямки, мкм 126,1±11,8* 131,3±12,6*

    Ширина желудочной ямки, мкм 19,6±2,1* 20,5±4,3*

    Высота клеток эпителия, мкм 16,1±1,2* 17,2±2,1*

    Ширина клеток эпителия, мкм 7,3±0,8 7,5±0,9

    Общая численная плотность клеток эпителия, на 1 мм 128±16 125±18

    Примечание: * — статистически значимые различия между отделами желудка при p Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

    2. Морфометрические показатели желёз слизистой оболочки желудка (дно, тело) кроликов калифорнийской породы контрольной и опытной групп, M±s

    контрольная (n=17) опытная (n=17)

    Объёмная плотность желёз, % 56,2±5,3 62,8±4,1

    Наружный диаметр желёз, мкм 39,3±3,6 41,9±4,7

    Количество главных клеток в железах, %# 51,2±4,8 60,9±3,7

    Количество париетальных клеток в железах, % 28,2±2,2 23,1±2,9

    Количество слизистых клеток в железах, % 13,7±1,6 9,9±2,7

    Другие типы клеток (эндокриноциты) 6,9±1,6 6,2±0,8

    Площадь сечения ядра главных клеток, мкм2 9,4±0,2 9,2±0,5

    Площадь сечения цитоплазмы главных клеток (мкм2) 38,5±5,4 36,2±7,1

    Ядерно-цитоплазматическое отношение (ЯЦО) главных клеток 0,24±0,01 0,25±0,02

    Площадь сечения ядра париетальных клеток, мкм2 16,5±1,0 17,2±1,9

    Площадь сечения цитоплазмы париетальных клеток, мкм2 124,5±9,9 121,1±10,5

    ЯЦО париетальных клеток 0,13±0,01 0,14±0,02

    Площадь сечения ядра слизистых клеток, мкм2 12,5±0,6 13,4±0,7

    Площадь сечения цитоплазмы слизистых клеток, мкм2 25,5±2,0 26,4±2,1

    ЯЦО слизистых клеток 0,49±0,04 0,51±0,04

    Примечание: * — статистически значимые различия между группами при p Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

    Ямка Шейка Железа

    Контрольная (n=17) 10,4±2,2 6,2±1,2 3,7±0,8 x2=12,3,/p 0,08

    Опытная (n=17) 0,14±0,04 0,08±0,02 0±0 Х2=5,1, p>0,07

    Общая численная плотность клеток собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 4681±920 4327±899 4124±888 Х2=4,8, p>0,1

    Опытная (n=17) 4699±860 4422±787 4282±564 Х2=3,6, p>0,1

    Лимфоциты собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 469±97 365±75 305±64 Х2=9,8, p 0,1

    Опытная (n=17) 143±45 131±31 118±59 Х2=2,7, p>0,1

    Эозинофильные лейкоциты собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 84±22 79±15 81±17 Х2=2,5 , p>0,1

    Опытная (n=17) 89±17 76±12 87±19 Х2=2,3 , p>0,1

    Плазматические клетки собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 342±98 298±79 279±67 Х2=3,7, p>0,05

    Опытная (n=17) 331±87 254±42 294±88 Х2=3,1, p>0,05

    Тучные клетки собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 183±48 212±59 202±91 Х2=4,2, p>0,05

    Опытная (n=17) 178±55 205±48 211±50 Х2=3,9, p>0,05

    Макрофаги собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 88±12 64±11 58±9 Х2=7,8, p Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

    Опытная (n=17) 85±17 71±13 62±11 Х2=6,9, p 0,05

    Опытная (n=17) 1488±221 1300±222 1188±198 Х2=3,2, p>0,05

    Фиброциты собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 778±115 802±115 819±200 Х2=2,4, p>0,05

    Опытная (n=17) 743±122 831±127 825±188 Х2=2,2, p>0,05

    Эндотелиоциты сосудов собственной пластинки слизистой оболочки, на 1 мм2

    Контрольная (n=17) 1190±115 1128±132 1125±120 Х2=0,9, p>0,05

    Опытная (n=17) 1111±223 1099±162 1127±215 Х2=0,9, p>0,05

    Примечание: * — статистически значимые различия между отделами желудка и p 0,05 (критерий Манна-Уитни)

    непосредственные результаты морфологического исследования, свидетельствует об отсутствии воспалительных изменений слизистой оболочки желудка на фоне использования кормовой добавки.

    1. Есенбаева К.С., Сидорова К.А. Физиологические особенности кроликов. Тюмень, 2004. С. 12—15.

    2. Семченко В.В., Артемьев В.Н. Гистологическая техника. Омск: Омская медицинская академия, 2006. 152 с.

    M. Preboc, Z. Djordjevic
    Институт авиационной медицины, Белград, Югославия

    Введение

    Многочисленные отчеты свидетельствуют о том, что хрусталик глаза может быть поврежден в результате облучения высокочастотной электромагнитной энергией (1,2,3). Правильность данной гипотезы была подтверждена в отношении микроволн, вызывавших помутнение хрусталика вследствие облучения экспериментальных животных. В наших предыдущих отчетах описывались результаты изучения глаз кролика, облученных микроволновым излучением (4,5). В свете полученных данных показалось интересным исследовать влияние света Биоптрон на глаз кролика. Кролик хорошо подходит для данного исследования, так как нет усложняющего фактора анестезии.

    Методы

    В работе использовался аппарат Биоптрон, излучающий поляризованный свет диапазоном 480 — 3800 нм. В качестве экспериментальных животных использовалось 5 взрослых кроликов-самцов. Перед обработкой светом Биоптрон глаза животных осматривались путем офтальмоскопии и биомикроскопии. После этого на правые глаза кроликов направлялся свет Биоптрон. Облучение проводилось ежедневно по 6 минут в течение 10 дней. Левые глаза не подвергались воздействую для последующего контроля. Правые глаза облучались светом Биоптрон с расстояния 10 см. После каждого облучения глаз осматривался путем офтальмоскопии и биомикроскопии.

    Результаты:

    Во время и после облучения глаз кроликов патологических изменений внешних и внутренних структур обнаружено не было. Биомикроскопия не показала патологических изменений роговицы, хрусталика и стекловидного тела. Офтальмоскопические исследования не показали гиперемию и дилатацию кровеносных сосудов, не было признаков геморрагии ретинальных сосудов. Через 10 дней после окончания облучения светом Биоптрон в ходе офтальмоскопических исследований патологических изменений не обнаружено. Общий вид глаз был нормальным. Общий вид хрусталиков оставался нормальным в течение всего исследования.

    Выводы:

    Вышеуказанные результаты подтверждают, что свет Биоптрон в описанных в эксперименте условиях не может вызывать помутнение хрусталика и другие патологические изменения глаза.

    Генетические изменения, трансформирующие диких животных в одомашненные формы, уже долгое время оставались загадочными. Теперь же международная группа ученых совершила прорыв, показав, что многие гены, контролирующие развитие мозга и нервной системы, были особенно важны для одомашнивания кролика. Результаты исследования, опубликованного в Science, дают ответы на многие генетические вопросы – сообщает sciencedaily.com.

    Одомашнивание животных и растений, необходимое условие для развития сельского хозяйства, является одной из наиболее важных технологических революций в человеческой истории. Одомашнивание животных началось еще от 9 000 до 15 000 лет назад и изначально в него были вовлечены собаки, крупный рогатый скот, овцы, козы и свиньи. Кролики были одомашнены значительно позже, около 1 400 лет назад, в монастырях на юге Франции. Считается, что кролики были одомашнены потому, что католическая церковь заявила, будто крольчата не считаются ни мясом, ни рыбой, и поэтому их можно было есть во время Великого поста. Когда произошло одомашнивание, дикий предок, Европейский кролик (Oryctolagus cuniculus), был ограничен Пиренейским полуостровом и югом Франции.

    «Есть несколько причин, по которым кролик является превосходным образцом для генетических исследований одомашнивания: его приручение был относительно недавним, мы знаем, где оно произошло, и этот регион по-прежнему густо населен дикими кроликами», объясняет Мигель Карнейро из CIBIO/Inbio (Исследовательского центра биоразнообразия и генетических ресурсов) университета Порту, один из ведущих авторов документа. «Дикие кролики также служат прекрасным примером для генетических исследований ранних стадий видообразования, как показано в сопутствующем исследовании, опубликованном в PLoS Genetics», добавляет Мигель Карнейро.

    Сначала ученые расшифровали весь геном одного домашнего кролика, чтобы разработать ссылочный геномный набор. Тогда они заново установили последовательности полных геномов домашних кроликов, представляющих шесть различных пород, и диких кроликов, отобранных в 14 различных местах по всему Пиренейскому полуострову и южной Франции.

    «Ни одно из предыдущих исследований одомашнивания животных не включало такого тщательного изучения генетической изменчивости у диких видов-предков. Это позволило нам определить генетические изменения, которые произошли во время одомашнивания кролика», говорит Лейф Андерссон, представляющий Университет Упсала, Шведский университет сельскохозяйственных наук и Сельскохозяйственный и политехнический университет Техаса.

    В отличие от домашних, дикие кролики обладают очень сильной реакцией бегства, потому что на них обычно охотятся орлы, ястребы, лисы и люди, и, следовательно, им нужно быть очень бдительными и реактивными, чтобы выжить в дикой природе. На самом деле, Чарльз Дарвин писал в труде «О происхождении видов», что «. нет животного более трудного в приручении, чем молодой дикий кролик; и нет животного более кроткого, чем молодой домашний кролик». Дарвин использовал домашних животных в качестве доказательства правильности идеи, что фенотип можно изменить выбором. Ученым, участвующим в данном исследовании, уже удалось выявить генетическую основу этого замечательного изменения в поведении, и изучение обеспечило важные новые выводы о процессе одомашнивания.

    Читайте так же:  Чем зимой можно кормить кроликов

    «Приручение кролика в первую очередь произошло за счет изменения частоты генных вариантов, которые уже присутствуют у дикого предка. Наши данные показывают, что одомашнивание в основном вовлекает небольшие изменения во многих генах, а не кардинальные изменения в нескольких генах», утверждает Керстин Линдблад-Тох, соавтор исследования, директор кафедры генной биологии позвоночных института Броада Массачусетского технологического института и Гарварда, профессор в университете Упсалы и содиректор лаборатории «Наука для жизни».

    Команда наблюдала очень мало примеров, когда вариант гена, распространенного у домашних кроликов, полностью заменил вариант гена, присутствующего у диких; это были скорее сдвиги в частотах этих вариантов, преимущественно встречающиеся у домашних кроликов.

    «Интересным следствием этого является то, что если вы отпустите домашних кроликов в дикую природу, есть возможность обратного отбора тех генов, которые были изменены в течение одомашнивания, потому что варианты «дикого типа» редко полностью потеряны. На самом деле, это то, что мы планируем изучить в дальнейшем», комментирует Мигель Карнейро.

    Ученые не нашли ни одного примера, в котором ген был бы инактивирован в процессе одомашнивания кролика и было бы намного больше изменений в некодирующей части генома, чем в частях генома, которые кодируют белок.

    «Результаты, которые у нас есть, очень четкие; разница между дикими и прирученными кроликами не в том, какие гены они несут, но в том, как их гены регулируются, к примеру – когда и сколько из каждого гена используется в различных клетках», объясняет Мигель Карнейро.

    Исследование также показало, какие гены были изменены в течение одомашнивания. Исследователи были поражены сильным обогащением генов, участвующих в развитии мозга и нервной системы, среди генов, являющихся особенно целевыми при одомашнивании.

    «Но это, конечно, совершенно логично в связи с резкими изменениями в поведении между дикими и домашними кроликами», заключает Керстин Линдблад-Тох.

    Исследование показывает, что дикий кролик является высокоэффективным полиморфным видом, который несет варианты гена, которые были благоприятными для одомашнивания, и что накопление множества мелких изменений привело к торможению сильной реакции бегства – одно из самых известных фенотипических изменений в эволюции домашнего кролика.

    «Мы прогнозируем, что аналогичный процесс произошел и у других домашних животных, и что мы не найдем несколько конкретных «генов одомашнивания», которые были бы важны для приручения. Вполне вероятно, что подобное разнообразие вариантов гена, воздействующих на мозг и нервную систему, имеется и в человеческой популяции и это вносит свой вклад в различиях в личностях и поведении», говорит Лейф Андерссон.

    История взаимодействия человека и кроликов многогранна: так, в книгу рекордов Гиннеса попал 25-килограммовый кролик, а вот на шотландском острове Канна кролики вытесняют местных жителей.

    Клинико-морфологическое исследование влияния суспензии «Витреоконтраст» на ткани глаза кроликов

    Клинико-морфологическое обоснование безопасности применения суспензии «Витреоконтраст» при ее интра-окулярном введении в глаз кролика. Экспериментальное исследование выполнено на кроликах породы шиншилла (п=32) весом 2-2,5 кг. Животные были разделены на 2 группы по способу введения «Витреоконтраста»: I группа — в переднюю камеру и II группа — в стекловидное тело. Введение однократное в объеме 0,1 мл суспензии. В парные глаза кроликов вводили сбалансированный физиологический раствор в дозе 0,1 мл. Проводили динамическое офтальмологическое исследование глаз кролика, включающее биомикроскопию, офтальмоскопию и электрофизиологическое исследование (электроретинография (ЭРГ)). Животные были выведены из эксперимента через различные интервалы времени (1,7, 14 и 30 дней) путем воздушной эмболии, глаза энуклеировали и проводили морфологическое исследование. Гистологические исследования были выполнены с помощью световой При клиническом наблюдении ни в одном глазу первой и второй группы не было выявлено воспалительной реакции и видимых изменений структур глаза. При анализе ЭРГ сетчатки опытных и контрольных глаз 2-й группы на 1-е сутки после интравитреальной инъекции суспензии «Витреоконтраст» отмечалось умеренное снижение биоэлектрической активности сетчатки, что проявлялось в снижении амплитуды в-волны в белом свете до 33 мс — 97 мкВ (норма 36 мс — 125 мкВ), что свидетельствует о ее легком повреждении вследствие операционной травмы. Через 7 дней отмечалось увеличение амплитуд в-волн до 35,5 мс -124,3 мкВ. Через 1 мес. не выявлено значимых отклонений b-волны от нормы. Морфологические исследования глаз обеих групп на ранних сроках исследования выявило наличие суспензии «Витреоконтраста» без воспалительных явлений и механического повреждения структур. В отдаленные сроки следов пребывания суспензии не обнаружено. При введении в переднюю камеру на протяжении всего эксперимента изменений структуры роговицы, радужки и цилиарного тела не выявлено. В глазах с интравитреальным введением структурных изменений и пролиферативных процессов со стороны сетчатки не отмечали. Выводы. Проведенные экспериментальные клинико-морфологические исследования показали, что суспензия «Витреоконтраст» при интраокулярном введении не оказывает токсического влияния на структуры глазного яблока.

    Издание: Офтальмохирургия
    Год издания: 2011
    Объем: 6с.
    Дополнительная информация: 2011.-N 4.-С.59-64. Библ. 9 назв.
    Просмотров: 47

    Ученые сумели выявить гены кроликов, связанные с устойчивостью к миксоматозу – вирусному заболеванию, которое в 1950-х годах позволило взять под контроль численность кроликов в Австралии. В исследовании сопоставлялись геномы современных кроликов с разных континентов, а также взятые из кроличьих костей, хранящихся в музеях, включая и скелет кролика, принадлежавшего Чарльзу Дарвину.

    Вирус миксоматоза кроликов (Myxomatosis cuniculorum) был обнаружен на рубеже XIX – XX века в Южной Америке. В 1896 году итальянский врач Джузеппе Санарелли (Giuseppe Sanarelli), выпускник Сиенского университета, стажировавшийся в Институте Пастера в Париже и основавший Институт гигиены в Университете Монтевидео (Уругвай), обнаружил, что привезенные им из Европы кролики, которых он хотел использовать в качестве лабораторных животных, погибли от неизвестной болезни. Проведя исследование, он описал найденный им вирус.

    Вирус миксоматоза под электронным микроскопом

    В 1920 году бразилец Энрике де Борепер-Араган (Henrique de Beaurepaire Aragao) доказал, что вирус передается с укусами блохи Ctenocephalides felis. Спустя семь лет тот же исследователь доказал, что естественным резервуаром вируса служат бразильские кролики (Sylvilagus brasiliensis). За много поколений они выработали устойчивость к болезни и отделывались лишь появлением небольших опухолей, не опасных для общего состояния здоровья. Однако для европейского кролика (Oryctolagus cuniculus) болезнь оказалась смертельной. Уже в 1926 году Энрике де Борепер-Араган предложил вирус австралийцам в качестве способа борьбы с кроликами, но те тогда сочли этот способ необычным и ненадеждым.

    Переносится вирус кровососущими насекомыми, преимущественно блохами и комарами. Возможно и заражение воздушно-капельным путем. У заболевших животных появляются небольшие твердые опухоли (миксомы) под кожей в области головы и половых органов. Развивается острый конъюнктивит, нередко переходящий в слепоту. Кролики становятся вялыми, теряют аппетит, у них повышается температура. Как правило, появляются вторичные бактериальные инфекции, которые вызывают воспаление легких. В зависимости от индивидуальной способности организма к сопротивлению кролик погибает в срок от двух суток до двух недель. К тому же наступившая слепота делает зараженного кролика более уязвимым для хищников.

    В 1950 году вирус был использован австралийским правительством для борьбы с многомиллионной армией кроликов в Австралии. В результате менее чем за три месяца миксоматоз распространился на 2000 км и убил 99 % зараженных животных. За несколько лет общая численность кроликов в Австралии снизилась с 600 до 100 миллионов.

    Набор для работы с вирусом миксоматоза, применявшийся в Австралии в 1951 году

    В июне 1952 года французский бактериолог Поль Арман-Делилль незаконно использовал вирус, чтобы избавиться от диких кроликов в своем поместье в департаменте Эр-и-Луар. Ущерб, который кролики наносили посадкам, был велик. Ученый вспоминал, что его сын, агроном, чтобы избежать разорения, вынужден был постоянно охотиться на кроликов и убивал до четырех тысяч в год. Но кролики плодились быстрее. Тогда Арман-Делилль выписал культуру вируса из лаборатории Лозанны и привил ее двум пойманным кроликам, которых потом выпустил на волю. Арман-Делилль рассчитывал, что изолированное положение поместья (территория в 300 гектаров была обнесена стеной) предотвратит распространение болезни. Но через четыре месяца выяснилось, что труп умершего от миксоматоза кролика нашли в пятидесяти километрах от места жительства ученого. Арман-Делилль обвинял в этом местных жителей, которые забирали найденные тушки умерших животных.

    Уже в 1953 году федерация производителей пушнины отметила снижение заготовок шкурок диких кроликов на 15-20% по сравнению с прошлыми годами. В октябре 1952 года Институт Пастера обнаружил вирус в трупе кролика в Рамбуйе в 45 километрах от Парижа. 24 июня 1953 года Арман-Делилль прочитал доклад в Сельскохозяйственной академии Франции, в котором описал проникновения вируса в страну, в октябре доклад и его обсуждение были опубликованы.

    Поль Арман-Делилль (1874 – 1963)

    В сезоне 1953-1954 годов охотники Франции добыли только 15 % от обычного числа кроликов, в следующем сезона – всего 2 %. В итоге к 1954 году 90% диких кроликов Франции были мертвы, а болезнь распространилась по Западной Европе, затронув Бельгию, Нидерланды, Италию и Испанию. В 1953 году вирус также сознательно был внедрен в Великобритании, год спустя – в Ирландии. Шкурку зараженного кролика отправили по почти из Англии в Ирландию. Там заразившихся местных кроликов специально развозили по разным уголкам острова, чтобы ускорить распространение болезни. Во всех странах, где появлялся миксоматоз, вымирало от 90 % кроликов или больше. Серьезный удар распространение болезни нанесло не только по кроликам, но и по пиренейской рыси (Lynx pardinus), ведь кролики составляли до 70 % ее добычи. Сейчас пиренейская рысь причислена к вымирающим видам, и в дикой природе насчитывается около четырехсот животных. Одной из мер по спасению вида стал повторный выпуск кроликов в местах его обитания.

    Во Франции Арман-Делилля благодарили фермеры и лесники, а проклинали охотники и кролиководы (вирус проник и в кроличьи хозяйства, нанеся им значительный урон). В январе 1955 года ученый был приговорен к штрафу в 5000 франков, однако полтора года спустя получил от директора департамента рек и лесов Франции почетную медаль с надписью «Благодарное лесное и сельское хозяйство». На одной ее стороне отчеканили портрет Арман-Делилля, на другой – изобразили мертвого кролика. В конце 1955 года законодательство Франции пополнилось особой статьей, запрещающей несанционированное распространение эпизоотий среди диких и домашних животных. Она предусматривала значительно более суровое наказание, вплоть до тюремного заключения до пяти лет. Но из-за отсутствия обратной силы у закона у Арман-Делиллю ее не применили.

    Однако некоторое время спустя смертность от миксоматоза начала снижаться. Наблюдающие за этим процессом ученые, как в Европе, так и в Австралии, пришли к выводу, что болезнь становится менее вирулентной, а кролики – более устойчивыми. Обследование, завершенное в 2005 году показало, например, что в Великобритании численность кроликов увеличивается в три раза каждые два года. В Австралии сейчас выживает 35 % зараженных диких кроликов. Таким образом, история миксоматоза вошла в учебники как пример коэволюции хозяина и паразита.

    Авторы нового исследования хотели проследить историю приспособления кроликов к вирусу более детально. Для этого они использовали кости и чучела кроликов, живших в счастливую для кроликов домиксоматозную эпоху, из одиннадцати музейных собраний Великобритании, Франции, Австралии и США. Среди них были и кости кролика, добытого в 1868 году Чарльзом Дарвином, хранящиеся сейчас в лондонском Музее естественной истории. Секвенированные геномы этих кроликов сопоставлялись с геномами современных диких кроликов. Всего было проанализировано около двухсот геномов.

    Кости кролика Чарльза Дарвина из Музея естественной истории в Лондоне

    Работа, опубликованная недавно в журнале Science, установила, что современные кролики в Австралии, Великобритании и Франции приобрели устойчивость к миксоматозу благодаря одним и тем же генетическим изменениям, произошедшим независимо. Ученые также обнаружили, устойчивость к болезни возникает в результате одновременного воздействия нескольких мутаций различных генов. Ведущий автор работы Джоэль Алвес (Joel Alves) говорит: «Мы сравнили кроликов, собранных до вспышки вируса в 1950-х годах, с современными популяциями, которые развили резистентность, и обнаружили, что одни и те же гены изменились во всех трех странах. Многие из этих генов играют ключевую роль в иммунной системе кролика. Часто эволюция происходит благодаря большим изменениям в отдельных генах, но наши результаты показывают, что устойчивость к миксоматозу, вероятно, развивалась благодаря множеству мелких эффектов, распространяющихся по всему геному».

    Три особенно значимых мутации были обнаружены в гене IFN-альфа 21A, отвечающим за синтез белка, который задействован в обнаружении вируса. В лаборатории ученые синтезировали форму белка, обнаруженную у кроликов в 1950-х годах, и современную форму, чтобы сравнить их взаимодействие с вирусом миксоматоза, проследив постепенное увеличение эффективности противовирусной обороны кролика.

    Понять, как именно устроено противодействия кроликов миксоматозу, важно не только с исторической точки зрения. Авторы работы полагают, что детали этого процесса окажутся важными для разработки мер противодействия другим болезням кроликов, в том числе геморрагической болезни кроликов, которая угрожает сейчас диким кроликам и кроличьим фермам в Европе и одновременно используется в Австралии для обуздания кроликов, которым уже не страшен миксоматоз.

    Однако и вирус миксоматоза не стал совсем уж безобидным. Джоэль Альвес говорит: «Похоже, что вирусная эволюция находит пути противодействия генетическим адаптациям, которые мы наблюдали. Было обнаружено, что недавние, более вирулентные штаммы вируса миксоматоза стали чрезвычайно иммуносупрессивными. Таким образом, гонка вооружений продолжается».