Кролики лечение ран

Самая распространённая причина появления у кролика царапин и порезов – выяснение отношений с сородичами.
Также они могут быть получены, например, из-за торчащего из клетки гвоздя. Нередко раны являются следствием нападения других животных: кошек, морских свинок, собак и др.

Обычно раны у кролика легко заметить, но иногда они бывают скрыты под шерстью. Последние можно увидеть только при плановом ежедневном осмотре животного.
Даже не значительная, на первый взгляд царапина, при попадании в неё грязи, пыли и навоза может привести к абсцессу. Поэтому их нельзя оставлять без внимания, думая, что само заживёт.

Как лечить

  1. Выстригите шерсть вокруг раны. Делать это следует ножницами с закруглёнными концами.
  2. Промойте рану перекисью водорода (3%) или слабым, светло-розовым раствором марганцовки.
  3. Если рана поверхностная, нанесите на неё стрептоцидовую либо другую подобную мазь и перевяжите стерильным бинтом, но не туго. Ежедневно меняйте перевязку до заживления раны.
  4. Если рана глубокая, кровотечение остановить сложно, наложите временную стерильную повязку и как можно быстрее доставьте питомца к ветеринару. Он осмотрит кролика, наложит швы (в некоторых случаях под анестезией) и назначит антибиотик.

Мелкие царапины и ранки достаточно обработать йодом или солёной водой. 1 ч. ложка на 0.5 л. кипячёной воды.

Микитин И. Л., Карапетян Г. Э., Винник Ю. С., Якимов С. В., Кириченко А. К.,

Глава 2. МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ РАНЕВОГО ПРОЦЕССА У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ

С целью обоснования эффективности лечения длительно незаживающих ран венозной этиологии методом, включающим в себя сочетание озонотерапии и ультразвука, был проведен эксперимент на 30 кроликах породы «Шиншилла» 6-месячного возраста обоего пола с массой тела 2,5–3,5 килограмма.

Все экспериментальные животные были разделены на 6 равных групп по 5 кроликов в каждой. В первой группе на протяжении всего эксперимента кролики оставались интактными. Во второй группе осуществлялось моделирование гнойно-некротической раны, лечение не проводилось. В третьей группе после моделирования гнойной раны, начиная с 4-х суток, дважды в сутки осуществлялось лечение, включающее в себя в первую фазу раневого процесса обработку раны хлоргексидином, а после образования грануляций – мазью «Актовегин». В четвертой группе лечение ран проводилось озонированной дистиллированной водой и озонированным оливковым маслом «Отри». Пятая группа состояла из 5 кроликов, получавших после моделирования гнойной раны лечение хлоргексидином и «Актовегином» в сочетании с ультразвуком. В шестой группе экспериментальных кроликов лечение гнойной раны проводили озонированной дистиллированной водой и озонированным оливковым маслом «Отри» в сочетании с ультразвуком. При гистологическом исследовании раны к 4-м суткам после моделирования во всех группах экспериментальных животных отмечалась однотипная картина: пролиферативные изменения в эпидермисе, обусловленные агрессивным воздействием патогенной микрофлоры. На фоне выраженного отека дермы происходила инфильтрация ткани лейкоцитами, отек определялся и в эндотелии мелких сосудов (рис. 2.1).

Лимфоциты, макрофаги и фибробласты были представлены в значительно меньшем количестве. Фибриновые волокна определялись в небольшом количестве с явлениями набухания и расплавления (рис. 2.2).

Рис. 2.1. Биоптат из края раны экспериментального животного 2-й серии
на 4-е сутки после моделирования. Пролиферативные изменения
в эпидермисе. Инфильтрация ткани лейкоцитами.
Окраска гематоксилином и эозином. Ув. Х200

Рис. 2.2. Биоптат из края раны экспериментального животного 2-й серии
на 4-е сутки после моделирования. Лейкоцитарная инфильтрация,
отек дермы. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х100

Микробиологическое исследование раны выявило большое количество кокков, расположенных в основном внеклеточно, что, вероятно, объясняется слабой выраженностью фагоцитоза (табл. 2.1).

Содержание клеточных элементов (в %) и кровеносных сосудов (количество на 1 кв. мм) в соединительной ткани из края раны
на 4-е сутки после моделирования

р* – значимость различий между несколькими группами по Н-критерию Краскела – Уоллиса (Kruskal – Wallis test);

р** – значимость различий между несколькими группами методом дисперсионного анализа (ANOVA).

К 9-м суткам после моделирования и 5-м суткам после начала лечения отмечались существенные различия при гистологическом и морфометрическом исследовании биоптатов из краев ран.

В контрольной группе в ране определялся выраженный отек. По прежнему на высоком уровне оставалось количество нейтрофильных гранулоцитов, увеличивалось количество капилляров на единицу площади дермы (рис. 2.3).

Несмотря на некоторое снижение полиморфно-клеточной воспалительной инфильтрации, достоверных отличий по сравению с 4-ми сутками после моделирования в контрольной группе выявлено не было.

В 3-й серии, где в течение 5 дней проводилось лечение хлоргексидином и актовегином, отек был выражен в меньшей степени. При исследовании качественного состава клеточных элементов наблюдалось увеличение процентного соотношения в пользу фибробластов и макрофагов. Возрастало количество сосудов на единицу площади дермы.

Рис. 2.3. Биоптат из края раны экспериментального животного
2-й серии на 9-е сутки после моделирования.
Отек, очаги деструкции, выраженная лейкоцитарная инфильтрация дермы. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. Х200

В 4-й и 5-й группах при использовании в течение 5-ти суток озонированной дистиллированной воды с озонированным оливковым маслом «Отри» и хлоргексидина, актовегина и ультразвука, происходило снижение отека и. достоверно по сравнению с контрольной группой уменьшалось количество нейтрофилов, увеличивалось количество новообразованных сосудов. Отмечалась начало формирования грануляционной ткани (рис. 2.4).

В 6-й серии при лечении гнойной раны озонированной дистиллированной водой и озонированным оливковым маслом в сочетании с ультразвуком к 9-м суткам после моделирования отмечалось уменьшение отека тканевых структур. Снижалось общее количество лимфоцитов, нейтрофилов, макрофагов с преобладанием доли фибробластов и макрофагов, в большом количестве определялись сосуды, прорастающие ткань с формированием грануляционной ткани (рис. 2.5).

Рис. 2.4. Биоптат из края раны экспериментального животного 5-й группы на 9-е сутки после моделирования. Умеренная инфильтрация ткани лейкоцитами. Начало формирования грануляционной ткани Ув. Х200

Рис. 2.5. Биоптат из края раны экспериментального животного 6-й серии на 9-е сутки после моделирования. Умеренная инфильтрация ткани лейкоцитами. Активная пролиферация сосудов капиллярного типа. Ув. Х200

К 9-м суткам послеоперационного периода в гистологических препаратах отмечалось уменьшение отека, снижение количества лейкоцитов и увеличение инфильтрации ткани макрофагами и фибробластами. Во второй серии кроликов, не получавших лечения, эти изменения были выражены в меньшей степени. В ткани определялся отек, клеточная воспалительная инфильтрация с преобладанием нейтрофилов. В количественном отношении число нейтрофилов в ране снизилось по сравнению с 4-ми сутками на 9,4 %, соответственно увеличилось число лимфоцитов и макрофагов, однако эти отличия не были достоверными. Прогрессирование воспалительного процесса снижалось за счет мобилизации защитных сил организма, ответа иммунной системы, но процессы очищения и заживления раны без лечения продвигались крайне медленно. В 3-й, 4-й и 5-й группах к 9-м суткам после моделирования значительных отличий в течении раневого процесса не отмечалось.

Количество нейтрофилов прогрессивно снижалось, увеличивалось процентное соотношение в пользу лимфоцитов, макрофагов и фибробластов (рис. 2.6). В ранах у животных этих серий заметно увеличивалось количество кровеносных сосудов.

Рис. 2.6. Биоптат из края раны экспериментального животного 4-й серии
на 9-е сутки после моделирования. Лейкоцитарная инфильтрация дермы, отек ткани. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. Х200

Читайте так же:  Зубы кролика не перестают расти

Более благоприятное течение раневого процесса отмечалась в 6-й серии. Количество нейтрофилов в биоптате из раны к 9-м суткам послеоперационного периода снизилось на 44,7 %.

Статистически значимо увеличилось количество макрофагов, фибробластов и кровеносных сосудов (табл. 2.2, 2.3, рис. 2.7).

Рис. 2.7. Биоптат из края раны экспериментального животного 6-й серии
на 9-е сутки после моделирования. Нарастает круглоклеточная инфильтрация с примесью макрофагов, фибробластов, пролиферация эндотелия мелких сосудов. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. Х400

К 12-м суткам эксперимента сохранялись наметившиеся тенденции заживления гнойных ран. Наиболее медленно протекали процессы регенерации в группе кроликов, не получавших лечения. Уровень нейтрофилов составлял 43,57 ± 2,63 % по отношению к другим клеточным элементам. Несколько увеличилось количество фибробластов, однако их было значительно меньше чем в других экспериментальныч сериях (рис. 2.8).

В 3-й, 4-й и 5-й сериях значительно уменьшалось количество нейтрофилов и возрастало процентное соотношение лимфоцитов, плазмоцитов и фибробластов (рис. 2.9).

Рис. 2.8. Биоптат из края раны экспериментального животного 2-й серии на 12-е сутки после моделирования. Лейкоцитарная инфильтрация дермы сохраняется. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. Х400

Рис. 2.9. Биоптат из края раны экспериментального животного 5-й серии на 12-е сутки после моделирования. Лейкоцитарная инфильтрация дермы незначительная. Окраска гематоксилин-эозин. Ув. х200

В большей степени эти изменения были выражены в 6-й группе, где для лечения применяли сочетание озонированной дистиллированной воды, озонированного оливкового масла и ультразвука (рис. 2.10, табл. 2.4, 2.5).

Рис. 2.10. Биоптат из края раны экспериментального животного
6-й серии на 12-е сутки после моделирования. Лейкоцитарная инфильтрация дермы минимальная. Преобладают фибропластическая трансформация дермы и новообразованные сосуды Окраска на коллагеновые волокна
по Ван-Гизону. Ув. х100

Для более объективной оценки полученных результатов был проведен сравнительный анализ гистологического исследования тканей у лабораторных животных контрольной группы, 3-й и 6-й группы. Следует отметить, что в большинстве наблюдений достоверных отличий между результатами лечения в 3-й, 4-й и 5-й группах выявить не удалось.

При сравнении процентного соотношения клеточных элементов и количества кровеносных сосудов на 1 квадратном миллиметре ткани вокруг раны у лабораторных животных к 12-м суткам послеоперационного периода, были получены следующие результаты: в контрольной группе сохранялся высокий уровень нейтрофилов, что можно интерпретировать, как подтверждение адекватности моделирования гнойной раны. При сравнении традиционного лечения и лечения с помощью озонотерапии и ультразвука количество нейтрофилов достоверно быстрее снижалось при применения озонотерапии и ультразвука (рис. 2.11).

Содержание клеточных элементов (в%) у экспериментальных животных в соединительной ткани из края раны
на 9-е сутки после моделирования

Инфекционный стоматит (мокрая мордочка) вызывается вирусом. Обильно течет слюна, смачивая нижнюю челюсть до груди, образуются язвочки на языке, воспаляется слизистая оболочка ротовой полости, бывает понос.

У больного животного резко снижается аппетит. Больше всего подвержен вирусу молодняк до 3 месяцев. Инкубационный период болезни составляет 2 -8 дней. Смертность — 3 — 5 голов из 10. Больным кроликам промывают полость рта 2-процентным раствором медного купороса или 2 раза в день засыпают рот порошком белого стрептоцида по 0,2 г каждому, повторяя лечение 2 — 3 дня. При этом кормят мягкой, легко усвояемой пищей. При своевременном лечении кролики выздоравливают через 3 -4 дня.

Пастереллез поражает многие виды животных, отмечены и случаи заболевания людей. Инфекция легко переносится от больного животного к здоровому через предметы ухода, кормушки, руки человека, работающего с кроликами. Заболевают взрослые животные и молодняк. Обычно кролики погибают очень быстро, на 1 — 3-й день, когда не успеваешь отметить у них каких-либо существенных признаков болезни. Поэтому такая внезапная смерть одного, а тем более нескольких животных является достаточным доводом подозревать это заболевание.

С лечебной и профилактической целью практикуется использование антибиотиков и сульфаниламидов. Шкурки и пух дезинфицируют.

Стригущий лишай. Очень опасное заболевание кожи и волосяного покрова. Может переходить на человека и домашних животных, поэтому кролиководу надо предельно старательно соблюдать личную гигиену. Возбудителями являются различные грибки. На коже заболевшего появляется шелушение, возникают плешины, а на них — пузырьки, покрывающиеся серо-белыми корками. Обычно больных животных забивают, самых ценных лечат по назначению врача.

Миксоматоз. Этот острый вирус переносят кровососущие насекомые. У больных кроликов опухают веки, наблюдаются гнойные выделения из глаз. На голове, спине, боках выступают опухоли, повышается температура. Через неделю-две животные гибнут. Больных миксоматозом забивают немедленно, а трупы сжигают.

Кроликовод при подозрении на любое заболевание непременно обратится в местную ветеринарную лечебницу и точно потом выполнит все указания врача. У него припасены различные медицинские препараты, которыми он и воспользуется, когда в крольчатнике обнаружит больных животных.

Что же нужно иметь в своей ветеринарной аптечке?

Норсульфазол. Белый или желтоватый кристаллический порошок без запаха. В воде растворяется плохо. Выпускается по 0,25, 0,3 и 0,5 г. Такая же дозировка и у таблеток. Хранят лекарство в хорошо закупоренных банках. Это средство обладает сильным противомикробным действием. Лечат им воспалительные процессы, используют в профилактике кокцидиоза.

Стрептоцид белый. Бывает и желтоватым кристаллическим порошком Как и таблетки, изготавливается по 0,5 г. В воде растворяется плохо. Производит противомикробное действие.

Биомицин, известный антибиотик, порошок желтого цвета, без запаха горький на вкус. В воде растворяется плохо. В кролиководстве им лечат инфекционные и простудные заболевания.

Борная кислота. Этот белый кристаллический порошок хорошо растворяется в воде, противомикробного действия. В смеси с тальком и крахмалом используют для наружного лечения ран.

Бриллиантовая зелень. Золотисто-зеленый порошок, 1 — 2-процентный раствор которого в обиходе именуется «зеленка». В воде растворяется плохо. Хранят в стеклянной посуде темного цвета. Благодаря противомикробному действию помогает в заживлении ран.

Ихтиол. Густая, почти черная жидкость с характерным резким запахом. Хорошо растворяется в воде. Обладает сильным противовоспалительным, обеззараживающим и противопаразитарным действием.

Йод. Блестящие серовато-черные, с металлическим оттенком кристаллы. Выпускается в основном в виде 5-процентной настойки. Хранят в темноте в стеклянных флаконах желтого цвета с плотно притертыми крышками. В воде растворяется плохо. Мощно воздействует на микробы. Для обеззараживания ран, язв, лечения чесотки и стригущего лишая применяют наружно, а внутрь — при кокцидиозе.

Фурацилин — либо желтый кристаллический порошок, либо таблетки, выпускаемые по 0,02 и 0,1 г. В воде растворяется плохо. Как сильное противомикробное средство применяется для лечения ран, маститов, кокцидиоза и заразного насморка.

Источник: Кролики: выращивание, переработка

Вы здесь

Вопросы задавать можно только после регистрации. Войдите или зарегистрируйтесь, пожалуйста.

Итак. На личном опыте хирургического удаления подобного недуга у кролика поделюсь:
Что такое абсцесс — это гнойное накопление в подбородочной (не только) части у кролика. Причина появления — в основном рана с последующим заражением.
Лечение:
Операция (1 день, два человека минимум).
1. Обрить область абсцесса (машинка, бритва).
2. Два-три укола обезбаливающего в центр опухоли и по краям.
3. Скальпель и ножницы (хирургические). Кожу надрезаем скальпелем, далее ножницами расширяем надрез. В зависимости от объема абсцесса.
4. Выдавливаем. Хирургической лопаткой вычищаем остатки.
5. Промываем открытую рану (ОБИЛЬНО) хлоргексидином (физраствором).
6. Вставляем марлевый тампон пропитанный мазью (левомиколь).
7. Антибиотик. Расчет на вес. Какой именно? Любой для данного вида животного послеинфекционного оперирования.
8. По возможности укол Гаммавита 0,2мл (взрослому кролику)
Занавес.

Читайте так же:  Припущенный кролик

Промывание (2 день). (можно одному, но надо фиксировать кролика).
1. Убираем марлевый тампон.
2. Промывание гнойной раны Диоксидином (1 ампула).
3. Задавливание мази левомиколь в рану (2-3см 0,5 куб. шприцем)
4. Два раза в день подобная процедура.
5. Антибиотик. Расчет на вес. Любой для данного вида животного послеинфекционного оперирования.
6. По возможности укол Гаммавита 0,2мл (взрослому кролику).

Промывание (3, 4 день). (можно одному, но надо фиксировать кролика).
Тоже, что и во второй день.

5, 6, 7 дни — гаммавит. 2 раза в день по 1мл подкожно (я колол в холку).

Финиш.
Замечания и конструктивные предложения по аналогам лечения приветствуются. Все остальное оставьте при себе (типа: дешевле съесть, сварить и т.п. или свозить в клинику и расщеплением оперировать).

Разумеется, кролик в карантине.

Просто вскрыть и промыть мало. По своему опыту скажу, пробовала лечить, все что вы описывали, делала, колола бициллин-3, бесполезно. Кролик с виду вроде идет на поправку. Мешочек от абсцесса отсыхает и отваливается, все с виду затягивается. НО! При прощупывании в районе гортани обнаруживается какое-то узелковое образование. Естественно вырезать его не представляется возможным, он как будто глубоко (когда вскрывала абсцесс, не только выдавливала, еще ощупывала изнутри его и саму шею). В общем спустя время снова появляется гнойный мешочек. И все по кругу. Так что мой опыт неудачен.
Если не жаль нервов, средств и самого кролика, лечите. Может вам повезет.

Смысл лечения?
Имея ввиду, что: разведение или еда?
В разведение допускаются здоровые животные.
Леченные от гнойных абсцессов? Которые вновь будут появляться. Как можно такого в разведение допускать, наживая добровольно себе на голову «танцы» вокруг будущих кроликов.
На еду? Прооперировать кролика, дождаться выздоровления и забить. чтоб съесть?
Только новичок, играя в Айболита, и наступая на личные, собственные грабли, впоследствии все-таки сможет сказать — не надо!
Но. пока все в новинку))).

Появление абцесса — наиболее часто причиной является стафилококк. Ирина Семеновна Минина описывает лечение по схеме, ( см. И.С.Минина, С.В.Леонтюк «Как разводить кроликов», Москва, Колос, 1981, стр.161-162). Лечение целесообразно, если кролик еще маловат, забивать его рано. Тогда пролечить, откормить и забить. Одноз

Причина появления — в основном рана с последующим заражением.

Нет. Причина появления — стафилококк. Нагноения могут вскрываться сами.

Разведение куропаток — это прибыльно.
Скайп Radasim2

Нет. Причина появления — стафилококк. Нагноения могут вскрываться сами.

Первое: Почитайте ту же книжку, что такое стафилокк и различия: мастит, абсцесс и пиемия.
Второе: вскрывается мастит, достаточно потом локальной обработки. Абсцесс я ни разу не встречал, что бы сам вскрывался. В любом случае при абсцессе нужно оперировать кролика и предпринимать дальнейшие профилактические меры.

Смысл лечения?
Имея ввиду, что: разведение или еда?
В разведение допускаются здоровые животные.
Леченные от гнойных абсцессов? Которые вновь будут появляться. Как можно такого в разведение допускать, наживая добровольно себе на голову «танцы» вокруг будущих кроликов.
На еду? Прооперировать кролика, дождаться выздоровления и забить. чтоб съесть?
Только новичок, играя в Айболита, и наступая на личные, собственные грабли, впоследствии все-таки сможет сказать — не надо!
Но. пока все в новинку))).

Ну, во первых у прооперированных кроликов и правильно залеченных после операции мастит снова не наблюдается на том же месте.
Во вторых цена самца или самки может быть не сопоставима с забоем. (у вашей собачки если мастит вылезет, вы же ее не поведете в бойню, а потом новую будете покупать. учитывая, что собачка не дешевая — правильно, будете лечить, так же и с кроликом (если только он недостался за шапку сухарей).
В третьих, в айболитов никто не играет. Есть конкретный пример, есть схема лечения. Есть путь выздоровления. Я в первом посте сразу описал в конце: Замечания и конструктивные предложения по аналогам лечения приветствуются., а не разводить тут демагогию, айболит не ауболит. Единсвенный, реальный пример дополнила Татьяна А.
В четвертых, как раз НОВИЧОК и не будет играть в вашего преславутого айболита, а просто битавлоб и на помойку (даже уверен 99%, что побрезгует освежевать и съесть потом.

4. Выдавливаем. Хирургической лопаткой вычищаем остатки.

Просто вскрыть и промыть мало. По своему опыту скажу, пробовала лечить, все что вы описывали, делала, колола бициллин-3, бесполезно. Кролик с виду вроде идет на поправку. Мешочек от абсцесса отсыхает и отваливается, все с виду затягивается. НО! При прощупывании в районе гортани обнаруживается какое-то узелковое образование. Естественно вырезать его не представляется возможным, он как будто глубоко (когда вскрывала абсцесс, не только выдавливала, еще ощупывала изнутри его и саму шею). В общем спустя время снова появляется гнойный мешочек. И все по кругу. Так что мой опыт неудачен.
Если не жаль нервов, средств и самого кролика, лечите. Может вам повезет.

Я там писал, что надо хирургической лопаткой вычищать капитально. Абсцесс — это не киста, которая поражает кость и удалять гнойные отложения не сложно, сложно «вышкребать» остатки этого всего. А вышкребывать надо, даже если кролик дергается, а он дергается и сильно, иначе, как в вашем случае, остатки потом вновь дают образования. Печальный опыт тоже опыт.

480 руб. | 150 грн. | 7,5 долл. ‘, MOUSEOFF, FGCOLOR, ‘#FFFFCC’,BGCOLOR, ‘#393939’);» onMouseOut=»return nd();»> Диссертация, — 480 руб., доставка 1-3 часа, с 10-19 (Московское время), кроме воскресенья

Автореферат — бесплатно , доставка 10 минут , круглосуточно, без выходных и праздников

Черненок Василий Васильевич. Физиолого-хирургические аспекты применения гидрофильной мази на коллагеновой основе при лечении случайных ран у животных : дис. . канд. вет. наук : 03.00.13, 16.00.05 Орел, 2007 113 с. РГБ ОД, 61:07-16/122

Введение к работе

з 1.

Актуальность темы. Среди незаразных болезней, наблюдаемых в животноводстве, хирургические составляют более 40 %, а раны и травмы различной этиологии регистрируют у 80 % пациентов с хирургической патологией (КИ Шакалов, 1972, ГС Кузнецов, 1980, АФ Бурденюк, В М Власенко, 1985)

Часто открытые повреждения осложняются раневой инфекцией (К И Шакалов, 1972, Г С Кузнецов, 1980)

На современном этапе при лечении ран и раневой инфекции используют разные методы, способы и антимикробные средства (Ю А Давыдов, А Б Ларичев, 1999, В А Черванев, 2002, М Pernn, 1990, D Whitby, 1995) Тем не менее, изыскание новых препаратов для стимуляции процессов регенерации остается актуальным

В доступной нам литературе (В В Кованов, И А Сыренков, 1978) имеются данные об уникальных свойствах коллагена во-первых, коллаген стимулирует спонтанную агрегацию тромбоцитов и является эффективным гемостатиком, во-вторых, коллаген легко образует комплексы со многими лекарственными средствами и биологически активными веществами, пролонгируя их действие по месту применения, в-третьих, экзогенный коллаген, являющийся основой препаратов, в организме полностью рассасывается, причем сроки его биодеградации можно регулировать, а продукты лизиса активно включаются в процессы раневой репарации, стимулируя регенерацию собственных тканей организма, в-четвертых, коллаген не обладает токсическими и канцерогенными свойствами

Читайте так же:  Живодерство кроликов

Имеются данные об использовании коллагена для стимуляции репаративных процессов в кожно-мышечных ранах у собак в послеоперационный период (В В Белогуров, 2005) Однако применение препарата на коллагеновой основе при лечении инфицированных ран изучены недостаточно В этой связи целью работы явилось разработать и провести физиолого-хирургическую оценку лекарственного средства,

4 приготовленного на основе биополимера коллагена при лечении экспериментальных ран у животных

Для достижения намеченной цели были поставлены следующие задачи

Получить коллагеновую массу из отходов кожевенного сырья.

Подобрать компоненты мази и их оптимальную концентрацию

3. Определить способ ее применения в зависимости от фазы раневого процесса

Изучить влияние приготовленной лекарственной формы на течение раневого процесса у экспериментальных животных

Проанализировать влияние мази на коллагеновой основе на некоторые морфологические и биохимические показатели крови у кроликов

Дать сравнительную оценку эффективности воздействия исследуемой мази и линимента бальзамического по Вишневскому на течение раневого процесса у животных в эксперименте.

Дать практические рекомендации по применению лекарственной формы на основе биополимера коллагена при лечении ран у животных.

Научная новизна. Впервые разработана лекарственная форма данного состава на основе биополимера коллагена. Изучен характер ее физиолого-хирургического влияния на течение раневого процесса у животных и скорость заживления ран Экспериментально обосновано применение коллагеновой массы в качестве основы лекарственной формы при лечении ран у кроликов

Теоретическая и практическая значимость работы.

Мазь на коллагеновой основе благоприятно влияет на течение раневого процесса, способствует сокращению сроков очищения ран от некротических тканей и появлению качественных грануляций Она уменьшает размер соединительнотканного рубца относительно традиционных методов лечения Это позволяет значительно сократить длительность лечения ран различной этиологии и в перспективе дать практические предложения по ее применению

На защиту выносятся следующие основные положения:

Подбор компонентов и приготовление мази на коллагеновой основе

Клиническая характеристика раневого процесса у крупного рогатого скота и кошек под действием мази

Клинико-морфологическое проявление раневого процесса у кроликов

Влияние мази на некоторые морфологические и биохимические показатели крови у кроликов

Сравнительная терапевтическая характеристика различных способов лечения гнойных ран

Апробация работы.

Основные положения диссертации доложены на научной конференции Брянской ГСХА (2005г), на международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарной медицины в условиях современного животноводства», РНИУП «Институт экспериментальной ветеринарии им С Н Вышелесского НАН Беларуси» (Минск, 2005г )

Публикации По теме диссертации опубликовано 4 работы

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 126 страницах машинописного текста и включает введение, обзор литературы, материалы и методику исследований, результаты собственных исследований, обсуждение результатов исследований, выводы и предложения, список использованной литературы включает 191 источников (138 отечественных и 53 зарубежных) и приложения Диссертация иллюстрирована 27 рисунками и 16 таблицами

Влияние коротковолнового ультрафиолетового облучения на заживление ожоговых ран (экспериментальное исследование)

Актуальность проблемы обоснована недостатком современной информации по лечению ожогов кожи с помощью коротковолнового ультрафиолетового облучения (УФО). Цель — оценить эффективность применения коротковолнового УФО в условиях эксперимента при курсовой терапии модельной стандартизованной ожоговой раны кожи у кроликов, начиная с пролиферативной стадии заживления, влияние приемов светолечения на систему крови, микробную обсемененность раны. В исследование были включены 24 кролика серой масти. Термическая рана наносилась специальным прибором с температурой 180 °С при экспозиции 3 с. Для лечения использовался аппарат БОП-4 (диапазон волн 180—280 нм). Облучение осуществляли через день в течение 8—12 мин, всего на курс 5 процедур. Использовались морфологические (окраска гематоксилином и эозином и по методу Ван Гизона, планиметрия), гематологические (общий анализ крови), биохимические (общеклинические), микробиологические (обсемененность раны) методы исследования. В результате установлено улучшение процесса заживления раны по скорости ее сокращения и морфологическим признакам эпителизации, общего состояния животных по динамике гематологических и биохимических показателей, а также снижение микробного числа. Заключение. На основе полученных данных коротковолновое УФО отнесено к эффективным методам лечения ожоговых ран кожи, а сами данные являются информативным дополнением к доказательной части эффективности светотерапии.

Издание: Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры
Год издания: 2020
Объем: 5с.
Дополнительная информация: 2020.-N 5.-С.38-42. Библ. 6 назв.
Просмотров: 22

Мясо кролика считается белым и является одним из самых диетических продуктов, поэтому ценится очень высоко. Диетические свойства кроличьего мяса заключены в первую очередь в высоком содержании легкоусвояемого белка, жиров же в нем очень мало. В результате практически любое приготовленное из кролика блюдо считается настоящим деликатесом и может удовлетворить даже самый взыскательный вкус.

Диетические свойства крольчатины стали причиной того, что именно это мясо врачи рекомендуют детям, в том числе и в качестве первого прикорма, пожилым людям и больным. Из мяса кролика можно приготовить огромное количество блюд: отличные вторые блюда, бульоны и супы, которые получаются прозрачными и ароматными.

Для длительного хранения мясо кролика подвергают солению и копчению, причем соление применяют, как правило, для последующего копчения.

В мясе кролика очень мало жира, поэтому при неправильном приготовлении оно становится сухим. Вот почему его лучше запекать или тушить, а также поджаривать до тонкой розовой корочки, давая ему возможность готовиться в собственном соку.

Чтобы засолить крольчатину, на каждые 2 кг мяса необходимо взять 2 ст. л. сухой соли, 1 ч. л. сахарного песка и немного просеянной древесной золы. Натертые этой смесью куски крольчатины складывают в кастрюлю и пересыпают солью. Поверх кладут деревянный круг, на который помещают груз. В течение полусуток крольчатину оставляют при комнатной температуре, а потом переносят в прохладное место, где мясо находится 10–12 дней. Каждые 3 дня куски мяса необходимо переворачивать, а когда они просолятся, их вывешивают на 2–3 дня для проветривания.

Можно использовать следующий способ засолки. Для приготовления раствора для засола на 1 л воды берут 1 ст. л. соли и 2–3 ч. л. древесной золы. Мясо должно быть полностью погружено в раствор, сверху кладут деревянный круг с отверстиями, через которые будет просачиваться раствор. Кастрюлю убирают на 2–3 дня в прохладное место, следя за тем, чтобы мясо было всегда покрыто рассолом. По истечении трех дней круг убирают и оставляют мясо еще на 6–7 дней. После этого его развешивают для просушки на 3–4 дня, а затем коптят.

При засолке куски мяса также можно переложить тмином, чесноком, лавровым листом или ягодами можжевельника, что придаст им дополнительный аромат.

Коптят крольчатину горячим и холодным способом.

Данный текст является ознакомительным фрагментом.