Кровь в глазе у кролика

Меню навигации

Пользовательские ссылки

Информация о пользователе

Вы здесь » Карликовые и декоративные кролики » Болезни, ветклиники и ветаптеки » У кролика кровь в глазе и в самом глаз>>

Сообщений 1 страница 9 из 9

Поделиться12011-03-13 16:24:33

  • Автор: Аджи Бибер
  • Откуда: Москва
  • Сообщений: 123
  • Позитив: [+16/-0]
  • Последний визит:
    2012-02-12 14:07:54
  • Подошли к кролику, у него кровь капает из глазика, и в самом глазике тоже кровь.Чем промыть и что это может быть?Ведет себя как обычно, прыгает, ест, горошит.Очень напуганы.В ветклинику сейчас врзможности нет везти, хотелось бы чем-то ему сейчас помочь.Подскажите.

    Поделиться22011-03-13 17:25:59

  • Автор: Сникерс
  • Откуда: Тюмень
  • Зарегистрирован: 2009-09-11
  • Приглашений: 0
  • Сообщений: 1910
  • Уважение: [+122/-1]
  • Позитив: [+148/-3]
  • Пол: Женский
  • Возраст: 46 [1973-09-26]
  • Последний визит:
    2020-02-17 12:37:14
  • Имя: Юлия
  • Наташ, может сеном наколол. или ещё чем-то.
    Что делать- незнаю, не сталкивалась с таким.
    Лечитесь. Выздоравливайте.

    Поделиться32011-03-13 17:57:56

  • Автор: voraa
  • Уважаемый кролик форума
  • Откуда: Москва, СВАО, Бутырский
  • Зарегистрирован: 2007-09-11
  • Сообщений: 1778
  • Уважение: [+106/-2]
  • Позитив: [+0/-1]
  • Пол: Мужской
  • ICQ: 234322613
  • Последний визит:
    2020-02-07 09:50:00
  • Может быть травма.
    У моих бывало такое (после драк).
    Я промывал раствором фурацилина, закапывал ципромед и солкосерил-глазной гель.

    Поделиться42011-03-13 18:25:56

  • Зарегистрирован: 2010-12-05
  • Уважение: [+0/-0]
  • Возраст: 40 [1979-11-06]
  • Сникерс, voraa, Спасибо большое, может и правда сеном наколол. Мне казалось, все таки кроли умные животные, как же сам себе травму сделал. ужасно испугались,когда подошли, смотрим, а кровь прям капает из глазика. Промыли ромашкой, т к боюсь больно сделать, не поняла, откуда кровь, но еще сочится..

    Я промывал раствором фурацилина, закапывал ципромед и солкосерил-глазной гель.

    а в аптеках это все продается без рецепта?солкосерил у нас в креме есть,подойдет?
    Спасибо еще раз большое!Я почему то подумала не про травму, а что то про внутренние органы.

    Чтобы спасти жизнь кролика и сохранить ему зрение, обратитесь к ветврачу и строго придерживайтесь всех его рекомендаций. Ветеринар осмотрит питомца, выяснит причины болезни, поставит точный диагноз и пропишет соответствующее лечение.

    Как лечить ушного клеща у кролика?

    Из эффективных и недорогих препаратов для лечения кроликов от клещей в ушах можно рекомендовать следующие лекарства:

    • Аверсектиновая мазь. Средство, разработанное специально для уничтожения psorotes cuniculi. Действующее вещество — аверсектин-с. Специально для кроликов.
    • Акаромектин. Считается идеальным по соотношению цена — качество. Действующее вещество — ивермектин 1%.
    • Стронгхолд. Капли от ушной чесотки. Действующее вещество — селамектин.
    • Спрей чистотел максимум. Один из немногих препаратов, выпускаемых в виде спрея, который действительно эффективен в борьбе с ушными паразитами. Действующее вещество — пирипроксифен и фипронил.
    • Опытные ветеринары также используют такие средства, как микодемоцид и бутокс. Однако фермеру-любителю не стоит браться лечить уши кроликов этими препаратами из-за их токсичности. Случайная передозировка может привести к плачевным результатам. Хотя при грамотном их использовании результат превосходный.

      В случае, если у кролика псороптоз дал осложнения, и помимо клеща в ушах уже развивается грибковое или бактериальное воспаление, простыми препаратами животное уже вылечить проблематично. Нужно применять сложные, многокомпонентные лекарства. Стоит упомянуть некоторые из них:

    • Амитразин. Недорогие капли, в состав которых входит акарицид, димексид и рапсовое масло.
    • Анандин-плюс. Содержит акарицид, иммуномодулятор и антибиотик.
    • Амит. В составе: акарицид, антисептик и противоаллергенный препарат.
    • Аурикан. Очень хорошее комплексное средство, в состав которого входит: акарицид, антисептик, инсектецид, обезболивающее средство и противоаллергенное средство.
    • Декта. Содержит акарицид, антисептик, обезболивающее и противоаллергенное средства.
    • Ивермек. Выпускается в виде спрея и геля. Содержит ивермектин, лидокаин и средства для заживления ран.
    • Перечисленные препараты — далеко не весь список лекарств. В продаже можно найти отоферонол, суролан, псороптол, акродекс, дикрезил и многие другие.

      Еще одна группа очень действенных лекарств выпускается в виде инъекций. Укол делается подкожно, в районе холки. Некоторые препараты вызывают болевую реакцию, поэтому вводить их нужно неспешно и осторожно. Существуют препараты импортного производства, но они ничем не лучше российского лекарства. Из передовых инъекций можно отметить:

      Специфических мер профилактики развития кровоизлияния в глаз нет.

      Повреждение мелких кровеносных сосудов глаза вызывает появление покраснение глаза или кровоизлияние.

      В зависимости от локализации поврежденного сосуда выделяют:

      — субконъюнктивальное кровоизлияние. Повреждаются сосуды слизистой оболочки глаза. Как правило являются спонтанными и развиваются без очевидной причины.

      — Гифема. Гифема — это скопления крови в передней камере глаза ( между роговицей и радужкой). Как правило, результат тупой травмы глаза. Сопровождается выраженным болевым симптомом и затуманенностью зрения. Такое кровоизлияние в глаз требует оказания неотложной помощи.

      — Гемофтальм. Кровоизлияние в стекловидное тело внутри глаза. Иными словами внутреннее кровоизлияние в глаз. При гемофтальме — появляется выраженный туман перед глазом. В случае полного гемофтальма -происходит потеря зрения. Гемофтальм — тяжелое поражение глаза. Без лечения возможна необратимая потеря зрения.

      — Кровоизлияние в сетчатку. Кровоизлияние в сетчатку развивается в результате кровотечения из сосудов сетчатки. Ткань сетчатки очень чувствительная и тонкая. Поэтому даже маленькие кровоизлияния могут привести к значительной потере зрения и развитию ретинопатии.

      Симптомы кровоизлияния в глаз

      Субконъюнктивальное кровоизлияние. Обычно, помимо сильного локального покраснения глаз, других симптомов нет. Очень редко, в случае повреждения крупного сосуда возможно появление болевого ощущения. При обширном кровоизлиянии возможно появление чувство давления в глазу.

      Сам участок кровоизлияния в глаз — имеет ярко-красную окраску, четкие границы. В случае обширных кровоизлияний в глаз кровь распространяется на всю белочную оболочку.

      Причины кровоизлияния в глаз

      Различают следующие причины появления этого симптома:

      — Воспаление слизистой оболочки глаза вызванное вирусами.

      — Внезапное и быстрое повышение артериального давления.

      — Сильный кашель, рвота.

      — Прием лекарственных препаратов разжижающих кровь ( аспирин, салицилаты, антикоагулянты).

      — Дефицит витамина К.

      — Нарушение свертываемости крови.

      — Общие заболевания : Сахарный диабет, Гипертоническая болезнь, системные васкулиты.

      — После глазных операций.

      Когда следует срочно обратиться к врачу?

      Обратитесь к врачу незамедлительно:

      — кровоизлияние случилось одновременно на 2-х глазах сразу

      — внезапная потеря зрения на одном или двух глазах

      — сильный туман пред глазом

      — кровоизлияние сопровождается болью и снижением зрения

      — кровоизлияние в глаз случилось в результате травмы глаза

      — вы принимаете препараты разжижающие кровь

      Как лечить кровоизлияние в глаз

      Субконъюнктивальное кровоизлияние в большинстве случаев не требуют лечения и проходит самостоятельно.

      В случае если вы испытываете боль и дискомфорт, врач может назначить противоотечные и противовоспалительные капли. При сопутствующей глазной инфекции назначают антибактериальные или противовирусные препараты. Как правило субконъюнктивальное кровоизлияние проходит за 2 недели, без осложнений.

      В остальных случаях кровоизлияний в глаз необходимо незамедлительное лечение в условиях глазного стационара.

      Чего не следует категорически делать?

      При появлении кровоизлияния в глаз не следует :

      — тереть глаза, это способствует усилению кровоизлияния

      — закапывать глазные капли без назначения врача

      — надевать контактные линзы

      — не следует самостоятельно отменять прием лекарств, если вы принимаете препараты разжижающие кровь, сообщите своему терапевту о появлении кровоизлияния.

      Что случится, если не лечить симптом?

      Самостоятельно без последствий для Вашего зрения и здоровья может пройти только субконъюнктивальное кровоизлияние.

      В остальных случаях, если не лечить, то возможна полная и необратимая потеря зрения. Появление такого симптома указывает на серьезную проблему глаз или всего организма.

      Профилактика кровоизлияния в глаз

      Специфических мер профилактики развития кровоизлияния в глаз нет. Если у вас возникают частые кровоизлияния обязательно пройдите обследование у терапевта для выяснения причины.

      Лечение основного заболевания, таких как сахарный диабет или гипертоническая болезнь, может предотвратить развитие осложнений в виде кровоизлияний в глаз.

      Приходите на диагностику в КазНИИ глазных болезней по адресу: Алматы, улица Толе би, 95а (угол улицы Байтурсынова).
      Телефон: +7 (775) 007 01 00; +7 (727) 279 54 36.

      СтепановаЛюдмила Васильевна,кандидат биологических наук,доценткафедры физикиСибирского федеральногоуниверситета (СФУ), г. Красноярск[email protected]СычевГеоргий Михайловичкандидат медицинских наук, доценткафедры глазных болезнейАбаканского медицинскогоколледжа,г.Абакан

      Физиологические механизмы транспорта водянистой влаги в глазу кролика

      Аннотация.Исследованы процессы движения водянистой влагив глазах кроликов. Направление ее движениявструктурахглаза исследовалипо перемещению флюоресцеина методом «остановленной диффузии». Пути ееоттокаопределяли по динамике накопления флюоресцеинав крови, взятых из отводящих сосудов глаза. По скорости измененияконцентрации флюоресценина в зависимости от величины онкотического давления в кровеносной системе и ингибированию активной транспортной системы (Na, KАТФазы) выявляли участие пассивного и активного механизмов вотведенииводянистой влаги.Установлено, что водянистая влага выводится через задний отделглаза. Ееотведениеиз глазапроисходит в направлении изхрусталика встекловидную камеру и затемк сетчаткес последующим выходом в сосудистую системуглаза.Далееводянистая влагапо вортикознымвенам глаза поступает в систему кровообращения. Движущей силой для перемещения водянистой влаги является высокий градиент онкотического давления, возникающего между белками плазмы крови сосудистой системы глаза и стекловидного тела.

      Ключевые слова:глаз кролика, отведениеводянистой влаги, стекловидная камера, вортикозные вены, онкотическоедавление.

      Водянистая влага, заполняющая внутренние полости глаза, находится в непрерывном движении посредством процессов притока и оттока. Функционирование глаза как органа во многом определяютводообменные процессы[1, 2].Общепринято, что циркуляцияводянистой влаги происходит непосредственно черезпереднийотдел глаза, «отработанная» часть не должна участвовать в метаболизме внутриглазных структур заднего отрезка глаза и по возможности должна быстро удалятьсяиз глаза.В современной литературе обсуждаютналичие и функционирование трех различных путей её оттока в глазучеловека, которые будучи взаимосвязанными рассматриваются как отдельные независимые системы, отводящие разное количество жидкости[3, 4]. Возникает некорректноепредставлениео циркуляцииводянистой влаги, т.к. не учитывают целостное представление о глазе.Широко используемые на практике офтальмологические методы клинического исследования гидродинамикиглаза, а также разнообразиеметодик, основанныхна оценке транспортных возможностей глаза invitro, не позволяют точно охарактеризовать транспортные процессы обновления в нём водянистой влаги и дают противоречивые взгляды на механизмы ее транспорта в глазу [5, 6].Поэтому изучение водообменныхпроцессов представляет научный интерес и является актуальным.Цельюисследованиябыловыявление закономерностей движения водянистой влаги в структурах глазакролика.

      В работе поставлены следующие задачи:?исследовать пути оттока водянистой влаги из переднего и заднего отделовглаза; ?определить механизмы, контролирующие выведение водянистой влаги из глаза.

      В экспериментахиспользовали15кроликов(30парыглаз) породы «Советская Шиншилла», весом1,53,0 кг, возраст37 месяцев, обоих полов, содержавшихсяв стандартных условиях в виварии ЗАО «Красфарма». Эксперименты проводилина животных без признаков патологии со стороны глазного яблока. Эксперименты соответствовали основным положенияммеждународной резолюции ARVO(Ассоциация по исследованию зрения и офтальмологии) по использованию животных в научных исследованиях.Для исследования движенияводянистой влаги в структурахглаза использоваликраситель 10%водный раствор флюоресцеина. Критерием выбора красителя служило следующее: малая степень ионизации и малая молекулярная масса (360 Дальтон), сопоставимаяс молекулярной массой метаболитов крови.Введение красителя в глазаживотных производилиследующим образом. В начале эксперимента проводили общую анестезию закапыванием в глаза раствора дикаина и внутривенным введением раствора новокаина. Затем животных фиксировали. На глаз животного накладывали векорасширитель и фиксировали глазное яблоко пинцетом, захватывая верхнюю прямую мышцу. Под прямым углом к оптической оси глаза через склеру в переднюю камеру и стекловидную камеру вводили 0,1 мл раствора флюоресцеина.Направление движения жидкости в структурах глаза исследовали в условиях invivoпо перемещению красителя методом «остановленной диффузии».Животным прижизненно вводили краситель в хрусталик (2 парыглаз) и в стекловидную камеру (2 парыглаз). В течение часа с интервалом 1530 минут глаза энуклеировали и сразу замораживали в жидком азоте. Замороженные глаза разрезали через место введения красителя с помощью микротома (Slide2002 Compact, Германия). Перемещение красителя регистрировали с помощью цифровой фотосъемки.Пути выведенияводянистой влагиизглазаисследовали методом Флюоресцентного анализа.Животные были разделены на три равных группы: контрольная группа(4 пары глаз)и две экспериментальные группы(по 4 пары глаз). Уживотных контрольной группы проводили контрольный забор крови из боковых ушных вен и вортикозныхвен глаза, которыебыли выделены при рассечении конъюнктивы.Животнымпервой экспериментальной группы прижизненно вводили флюоресцеин в переднюю камеруглаза, животным второй экспериментальной группы–в стекловидную камеру. В течение часа по истечение520мин после введения красителяу животных первой экспериментальнойгруппыотбирали пробы кровииз боковых ушных вен и вортикозныхвен глаза, у животных второй экспериментальной группыиз боковых ушных вен. Нативную кровь центрифугировали в течение 10 минут и отделяли плазму крови. Концентрацию флюоресцеина в плазме крови определяли на люминесцентном спектрометре AmincoBowman Series 2 (Thermo Spectronic, США). Длина волны возбуждающего излучения составляла 490 нм.По динамике накопленияи изменения концентрации флюоресцеина в крови, взятыхиз ушных вен кровеносной системы и вортикозныхвенопределяли пути выведения водянистой влагииз глаза.

      Участиепассивного транспорта, контролирующеговыведение водянистой влагииз глаза,

      исследовали методом флюоресцентного анализа.Животные были разделены на триравныхгруппы: контрольная группа(4 пары глаз)идве экспериментальные группы(по 4 пары глаз). Уживотных контрольной группы проводили контрольный забор крови из боковых ушных вен кровеносной системы. Животнымпервой экспериментальной группы внутривенно вводили раствор, уменьшающийонкотическое давления в кровеносной системе, животнымвторой экспериментальной группы раствор,увеличивающий онкотическое давление. Для уменьшения онкотического давления в кровеносной системе использовали 0,9% раствор NaCl (в расчете 20 мл на 1 кг веса животного), для увеличения онкотического давления 6% раствор высокомолекулярного вещества (ПВП) (в расчете 10 мл на 1 кг веса животного).Затем животным обеих экспериментальных групп в стекловидную камеру прижизненно вводили флюоресцеин. В течение полутора часовчерез каждые515 минут у животных забиралипробы кровииз боковых ушных вен кровеносной системы.Плазму крови отделяли центрифугированием и измеряликонцентрацию флюоресцеинана люминесцентномспектрометре.

      По изменениюконцентрации красителя в кровив зависимости от величины онкотического давления в кровеносной системеопределяли участие пассивного транспортав отведении водянистой влаги из глаза.Участие активного транспортав выведениеводянистой влаги из глазавыявлялипо ингибированию транспортного процесса. Животные были разделены на две группы: контрольная (4пары глаз) и экспериментальная (4 пары глаз). Встекловидное тело глаз животных контрольной группы прижизненно вводили 0,2 мл 0,9% раствора NaCl, животным экспериментальной группы –0,2 мл 0,9% раствора NaClс добавлением строфантинаК. Водный раствор строфантина К,с концентрацией 109 М В служил в качестве ингибитора активной транспортной системы (Na, KАТФазы).Поступление строфантина из стекловидного тела в кровеносную систему контролировали по изменениям частот сердечных сокращений животногопри помощиэлектрокардиографа (ЭК1Т–04). Изменение внутриглазного давление, вызванное уменьшениемскорости оттокаводянистой влаги приингибированииактивного транспорта, измеряли тонометромМаклакова..Результаты исследования оценивали с помощью статистической обработки.Наблюдения прижизненного распределения красителяв хрусталике и стекловидной камере замороженных глаз показали, что его распределение происходит в направлении от места введения к задней поверхности хрусталика с последующим выходом в стекловиднуюкамеру и дальнейшим его перемещением к заднему отделу глаза (рис.1а). Перемещение красителя к передней поверхности хрусталика не происходило. Визуальное наблюдение заднего полюса энуклеированного замороженного глазане выявило окрашивание сосудов перевазальных и переневральных пространств(рис.1б). Следовательно, выведение красителяиз стекловидной камеры происходило тольков сосуды кровеносной системы.

      абРис.1. Прижизненное распределение флюоресцеина в структурах глаза.

      Результаты исследования движениякрасителя, введенного в переднюю камеру глаза показали, что плазма крови вортикозных и ушных вен содержит краситель, причем наибольшая его концентрация содержится в плазме крови вортикозной вены. Следовательно, водянистая влага поступала в вортикозные вены глаза и выходила в вены общей кровеносной системы.

      Краситель, введенныйв стекловидную камеруглаза,также был обнаруженв венах кровеносной системы (кривая 2, рис.2). Исследования динамики накопления красителя ввенах кровеносной системы при различных величинах онкотического давленияв кровеносной системепоказало, что повышение онкотического давления увеличивало концентрацию флюоресцеина (кривая 3, рис.2), тогда как понижение онкотического давления уменьшало концентрацию флюоресцеина (кривая 1, рис.2). Согласно расчетам, изменение онкотического давления в кровеносной системе на 1мм рт.ст. усиливало или ослабляло скорость оттока внутриглазной жидкости в среднем на 0,2 мкл.

      Рис.2. Динамика изменения концентрации флюоресцеина в пробах плазмы крови, взятых из ушных вен, в зависимости от величины онкотического давления в кровеносной системе. Кривые: 1

      внутривенное введение раствора NaCl, 2–контроль, 3–внутривенное введение раствора высокомолекулярного вещества.

      Следовательно, перенос водянистой влаги в кровеносные сосуды глаза происходит по градиенту онкотического давления, величина которого ускоряет или замедляет скорость оттока внутриглазной жидкости из глаза.Постоянный градиентонкотического давления поддерживает концентрация белков, которая в плазме крови в кровеносных сосудах глаза выше, чем таковая в стекловидной камере.

      Необходимо также учесть, что отведение водянистой влаги из стекловидного тела в сосудистую системупроисходит непосредственно через сетчатку, которая

      содержит множествотранспортных систем, осуществляющих активный транспорт ионов, которые участвуют в образовании и передаче нервных импульсов.Вследствие этого,не исключенавозможностьактивного транспорта водянистой влаги через сетчатку.

      Введение ингибитора активного транспорта, строфантина К, в стекловидную камеру, вызвало учащениячастоты сердечного сокращения на 10%. Внутриглазное давление, возросшее в начале исследования до 35 мм рт.ст., по истечению 10 мин снизилось иоставалась неизменным (17 мм рт.ст.) в течение всего исследования.Следовательно,ингибирующее действие строфантина не влияет на скорость отведения водянистой влаги, поэтому ее транспорт в кровеносную систему не является активным.

      Представленные результаты исследования являются основанием для важного физиологического вывода: водянистая влага, поступающая изпереднего отдела глаза, выводитьсяизего структур через задний отрезок глаза. Водянистая влага из передней камерыглаза поступает вхрусталик и выходит из него встекловидную камеру. Далее онаперемещается к сетчатке в направлении заднего отрезкаглаза. Затем водянистая влагачерез сетчатку поступает в кровеносные сосуды сосудистой системы глаза. Движущей силойявляется высокий градиент онкотического давления, возникающий между белками плазмы крови в кровеносных сосудах глаза и стекловидного тела. Далее водянистая влага по вортикознымвенам глаза поступает в общий кровоток.

      Ссылки на источники

      1. Моисеева И., Штейн А.А. Гидравлическое моделирование массообменных процессов в глазу. // «Биомеханикаглаза–2005». Сборниктрудовконференции. –М.: МНИИГБ им. Гельмгольца, 2005. 138142 с.2. Chiho, ChiwingKong, ChuyanChan, M. Shahidullah, Chiwai Do. The mechanism of aqueous humor formation. // Clinical Experimental Ophthalmology. –2000. 85 (6). –Р. 335349. 3.Кошиц И.Н., Светлова О.В., Котляр К.Е., Макаров Ф.Н., Смольников Б.А. Биомеханический анализ традиционных и современных представлений о патогенезе первичной открытоугольной глаукомы // Глаукома. 2005. –Т. 1. 4162с.4. Светлова О.В. Биомеханические особенности взаимодействия основных путей оттока внутриглазной жидкости в норме и при открытоугольной глаукоме. //«Биомеханика глаза 2001»: сб.научн.тр.МНИИ ГБ им. Гельмгольца.М.2001.95119с.5. Алексеев В.Н., Самусенко И.А. Клиникоморфологические изменения в переднем отрезке глаза при экспериментальной глаукоме//Глаукома. –2004. –Т.1.

      37 с.6. Басинский С.Н., Штилерман А.Л., Басинский Р.С., Михальский Э.А., Шумская Ю.А. Способлечения нестабилизированной первичной открытоугольной глаукомы с «нормализованным» офтальмотонусом. // Клиническая офтальмология. –2003. –Т. 4 (2). 4549с.

      Stepanova LudmilaCandidate of Biological Sciences, associate professor at thechairofphysicsSiberianFederal University,Krasnoyarskslyudmil[email protected] of Medical Sciences, associate professor ofOphthalmologyMedical Collegeof Abakan, Abakan

      Physiological mechanismsaqueous humortransportinrabbiteye

      Abstract.The processes ofaqueous humormovement in the rabbits eyes were investigated.Its directionin structures eyewere investigatedbymovementfluorescein by the «diffusion stopped.» Its outflow way determinedby change of fluoresceinconcentration in the bloodtaken from theeye vessels. Change rate of fluorescein concentrationdepending on theoncotic pressurein the circulatorysystem and inhibition of transport systemactivity(Na, KATPase) revealed thepassive and activemechanismsinvolvementin leadaqueous humor.It was found that theaqueous humoris output from theeye back part.Herabductionfrom eyeis in the directionfromlens in thevitreous camera to the retina, and then with further accessto the eyevascularsystem. Furtheraqueous humorentersthe bloodstream byeyes vorticosae veins.The driving forcea highgradient oncotic pressurearising betweenplasma proteinsvascularsystem andthe vitreous chamber.

      Key words:rabbit eye, transport aqueous humor,vitreouschamber, vorticosaeveins,oncoticpressure.

      Последний писк ради моды

      30.05.2020 в 19:40, просмотров: 16109

      Если заглянуть за кулисы косметической индустрии, расхожее выражение о красоте, требующей жертв, сразу же перестанет быть расхожим. Жертвы у красоты действительно есть. Десятки тысяч подопытных кроликов, морских свинок, крыс, кошек, голубей в жутких муках оканчивают свой короткий век ради того, чтобы какая-нибудь модница могла очаровывать изящным взмахом густо накрашенных ресниц и прельщать ухажеров кроваво-красным цветом помады.

      Периодически в СМИ появляются сообщения об акциях защитников животных — то из зоомузея организованно сбегут толпы мышей, то из птичника «испарятся» совы. Но эти акции — капля в море, а десятки и сотни божьих тварей регулярно гибнут в лабораториях смерти.

      «МК» с помощью зоозащитников, врачей и ученых решил обнажить подноготную лабораторий красоты. Слабонервным просьба не читать.

      Кролики не плачут

      Век большинства лабораторных животных до безобразия недолог. Подчас он измеряется одним-единственным опытом.

      — Подопытные экземпляры привозятся к нам из специальных питомников, — рассказывает нам работница одного из московских вивариев. — В течение двух-трех недель они привыкают к новым условиям, отходят от дорожного стресса, и только после адаптации их забирают в лабораторию.

      А дальше — кому как повезет. Их счастье, если смерть будет быстрой и относительно безболезненной. Но такой милости от судьбы удостаиваются далеко не все. Десяткам, сотням тысяч, прежде чем их поглотит спасительное небытие, предстоит терпеть в течение многих часов и дней поистине адовы муки. Думаете, эпитет «адовы» — намеренное сгущение красок? Увы, нет.

      Вот, к примеру, классический промышленный тест Драйза, один из самых распространенных и хорошо известных во всех лабораториях мира. Животное фиксируется станком в области шеи на 21 день — именно столько длится эксперимент. Затем на слизистую оболочку глаза наносится тестируемое вещество. Все это время глаз практически гниет заживо. В опытах Драйза очень «любят» использовать кроликов-альбиносов. Считается, что роговица альбиноса обладает повышенной чувствительностью, и любые изменения на ней сразу же становятся видны. Кроме того, кролики не умеют плакать, поэтому можно не опасаться, что слезы смоют химическое вещество раньше, чем требует регламент.

      В некоторых странах под давлением зоозащитников «пытку» имени Драйза попытались модифицировать, в частности сократив сроки опыта с трех недель до одной. Разработчики тестов всерьез полагают, что так они облегчают страдания зверушек.

      Еще один из способов определить степень раздражающего действия на кожу и слизистые оболочки какого-либо компонента или состава — втереть его в кожу подопытного животного, предварительно сбрив на ней шерсть и надрезав шкурку. Кровоточащие язвы на телах зверушек — это самое щадящее описание того, что происходит в процессе испытания.

      Третий тест — «ЛД-50» («Летальная доза-50») — нацелен на определение смертельной для человека дозы какого-либо токсичного вещества. Зачастую подопытным вводят его прямо в желудок, через зонд. Что происходит дальше, думается, вы и сами можете себе представить. Хотя вот маленький штрих: крыса, корчащаяся в муках, в отчаянии отгрызает себе лапу, надеясь высвободиться из тисков фиксатора.

      Подобные тесты применяются не только для исследования фармпрепаратов, но и для косметики, средств по уходу за собой и той тяжелой химической артиллерии, с помощью которой хозяйки драят плиты и унитазы, стирают белье, дезинфицируют помещения.

      — А кто вам сказал, что они гибнут? Вот в нашей лаборатории — а она занимается проверкой косметических и гигиенических средств — одно животное может участвовать в испытаниях несколько раз, — утешили нас сотрудники следующего вивария. — Это в фармацевтике, как правило, «объекты» для экспериментов используются только единожды, и если остаются в живых, то следом «выводятся из опыта», подвергаясь эвтаназии. Но, если вы не знали, некоторые эксперименты там могут длиться месяцы и даже годы.

      Публичные казни

      Быть может, в момент эксперимента животное хотя бы накачивают обезболивающими? А вот и нет! Лишь в 1977 (!) году в СССР приказом министра здравоохранения было запрещено проводить опыты над животными без анальгетиков. Однако наступили «нулевые» российские годы, и адекватный наркоз для этих безобидных и невинных смертников из лабораторий вновь стал недоступной роскошью. А все потому, что появившийся в России Госнаркоконтроль приравнял кетамин к наркотикам. Кетамин же, по словам зоозащитников, хорош сразу с двух сторон: он погружает животное в сон и одновременно обеспечивает хорошую анальгезию. Сейчас вместо него в лабораториях в лучшем случае используют суррогаты, которые не способны в должной мере обеспечить обезболивание, в худшем — ставят опыты вообще безо всего, хотя для получения более-менее достоверных результатов животное не должно находиться в состоянии болевого шока.

      Та же картина затруднений — и в вузах, готовящих врачей, ветеринаров и биологов.

      В ряде образовательных учреждений выходят из положения «подручными средствами».

      — Студенты одного из московских вузов сообщили нам, что во время демонстрации фистулы Павлова (полостной операции) кролику вместо наркоза ввели в кровь 35-процентный спирт. И такая практика существует не только в столице, — рассказывает президент центра защиты прав животных биолог Ирина Новожилова. — Но алкоголь не притупляет боль!

      Правда, в январе 2020 года Минсельхоз России и ФСКН заговорили о том, чтобы упростить меры контроля за кетамином и вернуть его в ветеринарную практику. Однако, по словам Ирины Новожиловой, работа по его «реабилитации» растянется не на один месяц.

      Мыши — не люди

      Практика тестирования на животных берет начало с лабораторных опытов французских ученых XVIII века Клода Бернара, Маженди и Пастера. Но если раньше люди верили в результативность этого садизма, то в ХХ веке эффективность тестов на животных была поставлена под сомнение уже в самом научном сообществе.

      Одна из самых ярких и горьких иллюстраций к проторенному французами пути — это талидомид, препарат, активно выписывавшийся в конце 1950-х годов беременным в качестве седативного средства. Он прошел успешные испытания на мышах и был признан безвредным. Однако позже, когда у принимавших препарат женщин стали рождаться дети с врожденными физическими уродствами и пороками, медики и фармацевты пришли к выводу, что талидомид обладает тератогенным действием (то есть способен нарушать развитие эмбриона). А ведь у мышей, «принимавших» талидомид, рождалось здоровое потомство!

      — Это миф, что всеми достижениями в медицине мы обязаны экспериментам на животных. Более того, на стадии клинических испытаний на людях 95% лекарств, много лет испытывавшихся на животных, выбраковывается. Получается, что эти сотни миллионов жертв попросту напрасны, поскольку при переносе данных с кроликов и крыс на человека результаты исследований оказываются недостоверными, — говорит Новожилова.

      Та же ситуация с тестированием косметики и — отчасти — бытовой химии.

      — Кожа человека по своему строению имеет принципиальные отличия от кожи животных, — объясняет кандидат медицинских наук, врач-хирург Евгений Кузнецов. — Так что тестирование тех же косметических средств на животных бесполезно и бессмысленно. Это такое полуритуальное действие: на крысах, кроликах и кошках «потренировались» — значит, можно использовать и на людях. Но у человека есть ряд заболеваний — кожных или связанных с особенностями нервной, иммунной систем, — которые никогда не встречаются у животных. Уже из-за одного этого крайне трудно прогнозировать, как может в итоге «отозваться» на человеческой коже испытанное на животных средство.

      Тренажеры гуманности

      При этом отказываться от тестирования никто не призывает. Речь идет лишь о замене варварских опытов альтернативами — благо их на данный момент придумано множество!

      И лучшая альтернатива, кстати, по мнению ученых, — это культура человеческой клетки: она дает возможность изучить воздействие препарата именно на организм нomo sapiens.

      — Мы можем статистически достоверно изучить конкретную реакцию на конкретное вещество на клеточных культурах, — убежден Кузнецов. — Конечно, каждый организм уникален, и риск получить незапланированный эффект все равно сохранится. Но все-таки степень достоверности альтернативных методик неизмеримо выше, чем опыты над животными.

      Чтобы получить биоматериал, достаточно микроскопического участка человеческой ткани (естественно, донорского, полученного, к примеру, в результате хирургических операций). Далее клетка пересаживается в питательную среду и достаточно быстро размножается. На ней как раз можно без вреда для всего живого тестировать косметику и бытовую химию. Еще один тест, который признан мировым сообществом тождественным тесту Драйза, — это HET-CAM, наглядный и куда менее затратный, чем классика «живодерного жанра». Его также используют для оценки воздействия вещества на глаз и его слизистую оболочку. Но испытываемый «материал» наносится на тончайшую хориоаллантоисную оболочку куриного яйца, которая реагирует на него набуханием и покраснением. Затем по шкале определяются опасность и токсичность вещества. В опыте «участвуют» только те яйца, у зародышей внутри которых еще не успела сформироваться нервная система. Считается, что на этом этапе эмбрионы не способны испытывать болевые ощущения.

      Понуждение к милосердию

      А сколько еще всего существует! Манекены, симуляторы, муляжи, компьютерные модели, позволяющие выбрать и виртуальное животное (список довольно внушительный), и химические компоненты для теста, а затем в режиме реального времени наблюдать за ходом опыта, при этом имея возможность «отмотать пленку» на несколько шагов назад, если ты в чем-то сомневаешься, что-то проглядел или не усвоил. Последнее актуально для студентов вузов.

      Для будущих медиков и ветеринаров также разработаны муляжи, которые позволяют проводить опыты на органах животных, полученных из этичных источников.

      Несмотря на существующие альтернативы, отечественные производители не спешат их применять. Одна из причин — законодательная. В России до 2011 года попросту не выдавали сертификаты на косметические средства, не прошедшие тестирование на животных. Теперь представителям косметической индустрии позволено использовать альтернативные методики (на бытовую химию это, к сожалению, не распространяется), однако многие компании — по своим, одним им ведомым соображениям — предпочитают действовать «по старинке».

      — Минздрав России в ответ на протесты зоозащитников говорит, что сегодня у производителя уже есть выбор — тестировать косметику на животных или альтернативно. Поэтому, дескать, и не имеет смысла вводить полный запрет на законодательном уровне, — говорит президент благотворительного фонда помощи животным Анастасия Комагина. Получается прямо-таки каламбур: в теории альтернатив хоть отбавляй, но на практике альтернативы тестирования своей продукции не на животных многие компании в упор не видят.

      В хвосте Европы

      Но даже если испытательные центры и выбирают альтернативные пути, то далеко не всегда косметику, получившую у них сертификат, можно назвать этичной. Сотрудники одной из московских лабораторий, сертифицирующих парфюмерно-косметическую продукцию (на сперме быков или же на куриных эмбрионах), любезно поведали нам, что проверку проходит у них готовая продукция. А вот каким образом тестировался каждый из ингредиентов, прежде чем стать составной частью губной помады, бальзама для волос или лака для ногтей, и сколько на его счету загубленных подопытных, точно знает лишь производитель косметики, который первоначально заказывает исследование каждого отдельного компонента.

      — Знай наш потребитель больше о существовании этичной и неэтичной косметики, он мог бы голосовать рублем за тех производителей, которые предпочитают альтернативу средневековой жестокости. Это бы стало хорошим стимулом для всех преодолеть косность мышления и перейти на альтернативы, — считает Новожилова.

      Европа, к слову, в вопросах биоэтики и защиты прав животных шагнула далеко вперед не только России, но и планеты всей. В 2002 году Великобритания запретила проводить на своей территории косметические тесты на животных. В 2009 году ее примеру последовали другие члены Евросоюза. А 11 марта 2013 года страны Старого Света наложили мораторий на зверские опыты во имя красоты и запретили ввозить на свою территорию косметику из тех государств, где варварство продолжает расцветать буйным цветом.

      Увы, в «черном списке» производителей косметики и бытовой химии, не заморачивающихся вопросами гуманности и пачками отправляющих лабораторных зверьков на тот свет, — множество мировых гигантов с многомиллиардными оборотами и брендами, которые на слуху у каждой российской женщины. И не только на слуху, а на полках в ванных, в шкафах на кухнях, в косметичках…

      Комментарий заведующего виварно-экспериментальным комплексом МГУ, кандидата биологических наук Максима ЛОВАТЯ:

      — Сегодня существуют альтернативы опытам на животных, но они не являются полной их заменой. Скорее, это важное промежуточное звено, ускоряющее получение данных и позволяющее сильно сократить количество используемых животных.

      Обезболивание применяется всегда, за исключением тех случаев, если оно может исказить результаты опытов. Из разрешенных наркозов используют золетил, изофлюран, инертные газы, а для короткого обезболивания — углекислый газ.

      Если брать фармацевтику, то каждая лаборатория выбирает ту модель, которая наиболее точно доказывает наличие нужного свойства у будущего лекарства. У каждой модели, в том числе у разных видов животных, есть свои преимущества и недостатки. Другое дело — безопасность будущего лекарства или косметики. Здесь компромиссов быть не может: нужно доказать отсутствие вреда на организм в целом. Без использования животных сделать это очень сложно.

      СПРАВКА «МК»

      По данным Британского союза за отмену вивисекции (BUAV), ежегодно в лабораторных застенках гибнет 115–150 миллионов животных. Эксперименты, уже по информации Европейского Союза, проводятся в четырех направлениях. 65% испытаний связано с медицинскими препаратами, 26% — с различными научными исследованиями (в том числе военными, космическими). На долю косметической индустрии приходится 8% от всех жертв. 1% от общего количества подопытных животных гибнет в результате подготовки специалистов в медицинских, биологических и ветеринарных вузах.

      Уважаемые читатели!

      Свои вопросы и предложения направляйте на [email protected]

      Заголовок в газете: Последний писк ради моды
      Опубликован в газете «Московский комсомолец» №26537 от 31 мая 2020

      Links

      • Espacenet
      • Global Dossier
      • Discuss
      • 239000003814 drug Substances 0 abstract 2
      • 239000000243 solutions Substances 0 abstract 1
      • 239000000126 substances Substances 0 abstract 1
      • Images

        Abstract

        Description

        Лечение ожоговой травмы глаза представляет важную социально значимую проблему, т.к. в настоящее время частота ожогов глаза постоянно растет, ожоговая болезнь глаза трудно поддается лечению и нередко приводит к инвалидности лиц молодого трудоспособного возраста.

        Изъязвление роговицы, возникающее при ожогах глаза, является основной причиной снижения зрения в результате этой травмы. Значительно ухудшает течение репаративного процесса возникающая после ожога ишемия конъюнктивы, которая препятствует заживлению и нередко приводит к необходимости хирургического иссечения участка некроза. Поэтому одними из наиважнейших задач в медикаментозном лечении ожога глаз является предупреждение или снижение интенсивности изъязвления роговицы и восстановление микроциркуляции в конъюнктиве.

        В комплексном медикаментозном лечении ожогов глаз используют антибактериальные и антисептические лекарственные средства, антипротеоли-тические препараты, антиоксиданты, антигипоксанты, средства, оказывающие регенеративное действие и улучшающие микроциркуляцию (Рациональная фармакотерапия в офтальмологии // под ред. Е.А. Егорова. М.: Литтера. 2006. С.652-657; Морозов В.И., А.А. Яковлев // Фармакотерапия глазных болезней. М.: МЕДпресс-информ. 2009. С.169-179).

        При травматическом повреждении тканей, в том числе тканей глаза, происходит перестройка различных метаболических процессов, например протеолитических и свободно радикальных, направленная на очищение раны, но одновременно служащая причиной расширения зоны повреждения. Происходит истощение пула эндогенных антиоксидантов, что сопровождается возникновением так называемого окислительного стресса (Зенков Н.К., Ланкин В.З., Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс // МАИК «Наука/Интерпериодика». М. 2001. 343 с). Свободные радикалы повреждают мембранные структуры клеток, структурные и функциональные белки, усугубляют нарушение микроциркуляции, возникающее при травме. Нарушение микроциркуляции в тканях приводят к ишемизации тканей, развитию тканевой гипоксии, что одновременно способствует и усилению окислительного стресса. Поэтому для лечения раневого процесса целесообразно местное применение антиоксидантов и антигипоксантов. Тем не менее, имеется недостаточное количество препаратов антиоксидантного и антигипоксантного действия для местного применения при ожогах глаза.

        Известен способ лечения ожогов глаз путем субконъюнктивальных инъекций антиоксиданта эхинохрома («Гистохром») (RU 2038088, 1995). Показана эффективность местного применения в качестве антиоксидантной терапии эмоксипина и пиридоксина (Архипова Л.Т., Долгова И.Г. Прогностическая значимость местных и системных показателей перекисного окисления липидов и антиоксидантной системы при проникающих ранениях глаз и их динамика на фоне местного применения антиоксидантов // Вестн. офтальм. 2001. №5. С.37-40).

        Травмы и ожоги глаза являются показанием для применения препарата Эрисод, действующим началом которого является антиоксидантный фермент супероксиддисмутаза, который выпускается в виде порошка для приготовления глазных капель, т.к. в растворе фермент быстро теряет активность, что неудобно в применении (инструкция по применению).

        На основе L-карнозина разработаны глазные капли Севитин, одним из механизмов действия которого является ингибирование перекисного окисления липидов, и показанием к его применению являются травмы роговицы различной этиологии (инструкция к применению).

        Для заживления ран роговицы предлагается использовать антигипоксанты, которые усиливают энергопродукцию в клетке в системе митохондриального окислительного фосфолирирования. К антигипоксантным препаратам относят сукцинатсодержащие и сукцинатобразующие средства. Показано положительное влияние янтарной кислоты на течение раневого процесса в глазу (Бржеский В.В., Голубев С.Ю., Шумакова К.Н., Саватеева Т.Н., Коваленко А.Л. Изучение эффективности препарата Офтальген в лечении раны роговицы в эксперименте // Сб. тр. II Евро-Азиатской конф. по офтальмохирургии, Екатеринбург.2001. С.195-196; Румянцева О.А., Кузнецов С.Л., Спивак И.А., Румянцева Н.Д. Сравнительная оценка влияния стероидных гормонов и соли янтарной кислоты на процесс регенерации роговицы после фоторефракционной кератэктомии // Тез. докл. конф. Пролиферативный синдром в офтальмологии. М. 2002. С.101-102). Известны глазные капли Кератоник, содержащие натрия сукцинат, а также модификации этих капель (Патент №212825 от 20.11.1998, Патент №2127099 от 10.03.1999).

        Как следует из вышепредставленных данных, глазных капель для лечения ожогов глаз, обладающих антиоксидантным или антигипоксантным действием, существует в настоящее время очень немного, отсутствуют препараты, оказывающие одновременно антиоксидантное и антигипоксантное действие, т.е. сочетание свойств, которые имеются у Мексидола.

        Ближайший аналог. Глазные капли Эмоксипин 1% рекомендуется применять для лечения ожогов глаз (Инструкция к применению). Эмоксипин (метилэтилпиридинола гидрохлорид) в виде глазных капель широко применяется в офтальмологии. Показаниями к применению Эмоксипина в виде глазных капель являются воспалительные процессы в роговице, в том числе вызванные ожоговой травмой, кровоизлияния в переднюю камеру глаза, лечение осложнений при близорукости, защита роговицы при ношении контактных линз.

        В то же время в некоторых исследованиях показана недостаточная эффективность эмоксипина при лечении ожогов глаз (Травкин А.Г., Шульгина Н.А. Сравнительная оценка оксидантной и антиоксидантной системы крови у кроликов с щелочными ожогами глаз при лечении антиоксидантами // Вестн. офтальм. 2004. №5. С.26-28). Имеются данные о слабой антиоксидантной активности эмоксипина (Бабенкова И.В., Теселкин Ю.О., Макашова Н.В., Гусева М.Р. Антиоксидантная активность гистохрома и некоторых других лекарств, используемых в офтальмологии // Вестн. офтальм. 1999. №4. С.22-24).

        Мексидол принципиально отличается от Эмоксипина тем, что он является сукцинатсодержащим производным 3-гидроксипиридина. Будучи производными 3-гидроксипиридина, эти препараты структурно близки к соединениям группы витамина Вб, которые являются необходимыми компонентами ключевых ферментативных процессов, участвующих в обмене аминокислот и биогенных аминов, что во многом определяет биологические свойства Мек-сидола и Эмоксипина. Антиоксидантные свойства оксипиридинов определяются полярностью ОН-связи. Антиоксидантные свойства Мексидола обусловлены несколькими его особенностями: он может взаимодействовать с ионами Fe 2+ , с водорастворимыми радикалами, в том числе с супероксид-анионом, способен повышать эффективность эндогенной антиоксидантной системы (Лукьянова Л.Д., Романова В.Е., Чернобаева Г.Н., Лукиных Н.В. Особенности антигипоксического действия мексидола, связанные с его специфическим влиянием на энергетический обмен. Хим.фарм. журнал.-1990. №8. С.9-11.). Антигипоксические свойства Мексидола связывают с наличием в нем сукцинатного радикала. Сукцинат, являющийся составной частью Мексидола (что отличает его от Эмоксипина), входит в число субстратов цикла Кребса, который обеспечивает основные энергетические потребности организма, что определяет антигипоксантные свойства этого производного гидроксипиридина. Сукцинат самостоятельно плохо проходит через тканевые барьеры, но пиридиновое основание облегчает проникновение сукцината чрез клеточные мембраны.

        Мексидол выпускается в виде раствора (5%) для внутривенных и внутримышечных инъекций и в таблетированной форме. Он нашел широкое применение в медицине в качестве нейропротекторного средства, антигипоксанта и антиоксиданта, оказывающего энерготропное воздействие при ишемических состояниях и метаболических нарушениях. Выраженное терапевтическое действие Мексидола при сердечно-сосудистой, неврологической патологии, согласно экспериментальным исследованиям Т.А. Ворониной, определяется тем, что препарат является веществом «коктейльного типа», сочетающего разные эффекты.

        Использование Мексидола в виде глазных капель для лечения травматического процесса в глазу, в том числе ожогов глаз, представляется весьма перспективным, поскольку этот препарат сочетает в себе антиоксидантные свойства с антигипоксантными.

        Мексидол, выпускаемый в таблетированной лекарственной форме и в виде раствора для инъекций, широко и успешно применяется в различных областях медицины. В неврологии и психиатрии он используется в качестве средства ноотропного и противоишемического действия (Воронина Т.А. Антиоксидант мексидол. Основные нейропсихотропные эффекты и механизм действия. // Психофармакология и биологическая наркология. — 2001. №1 С.2-12). В кардиологии показано, что Мексидол улучшает течение инфаркта миокарда, ускоряет стабилизацию стенокардии (Гацура, В.В., Пичугин В.В., Сернов Л.Н., Смирнов Л.Д. Противоишемический кардиопротекторный эффект мексидола. //Кардиология. 1996. №11. С.59-63). Мексидол применяют при повреждениях тканевых структур организма различной этиологии (Новиков В.Е., Ковалева Л.А., Лосенкова C.O., Климкина Е.И. Фармакология антиоксидантов на основе 3-оксипиридина. // Вестник Смоленской Гос.мед. акад. 2004. №1). Применение после гинекологических операций снижает воспаление и улучшает процессы репарации послеоперационной раны. Показана эффективность Мексидола для лечения эрозивно-язвенного поражения гастродуоденальной зоны, перитонита. Обнаружены гепатопротекторные свойства Мексидола. В хирургии Мексидол используется для местного лечения гнойных ран, для чего производятся перевязочные материалы с иммобилизованным Мексидолом, при таком способе применения Мексидола показано снижение перекисного окисления липидов. На модели ишемии кожи продемонстрировано антигипоксическое и антинекротическое действие Мексидола, которое авторы работы связывают с увеличением активности антиоксидантных ферментов, улучшением процессов энергетического обеспечения. В качестве противовоспалительного средства Мексидол успешно используется в стоматологии.

        В офтальмологии Мексидол при системном применении у больных с заболеваниями глаз дегенеративно-дистрофического происхождения способствовал поддержанию или расширению поля зрения (Малышев В.Е., Сальникова О.И. Опыт применения препарата «Мексидол» в комплексном амбулаторном лечении больных с заболеваниями глаз дегенеративно-дистрофического происхождения // Бюлл. экспер. биол.и мед. 2006. приложение 1. С.55-57). Есть данные об эффективности системного применения Мексидола в комплексном лечении острого посттравматического увеита (Марачева Н.М., Панова И.Е., Графова Т.В. Клиническая эффективность препарата Мексидол в комплексном лечении острого посттравматического увеита и его влияние на показатели локальной гемодинамики у пациентов с проникающим ранением глазного яблока//РОЖ. 2012. Т.5. №1. С.51-56).

        В офтальмологии местно Мексидол вводили в лимфатический регион орбиты для лечения послеоперационных осложнений после экстракции катаракты (Патент RU (11) 2290203 (13) С1 от 2006.06.27.

        Запатентовано средство для профилактики и лечения офтальмологических заболеваний, которое представляет собой гель и содержит в своем составе мексидол (Патент (19)RU (11)2359658 (13)С1). Однако в доступных источниках мы не обнаружили сведений об эффективности его применения в офтальмологии, в том числе при ожогах глаза.

        Нами было показано, что инстилляции глазных капель Мексидол ускоряют репарацию эпителиальной раны роговицы у кролика, усиливая пролиферацию эпителия, и что Мексидол проявляет высокую антиоксидантную активность в отношении супероксид анион-радикала и гидроксильного радикала как в модельной системе, так и в слезной жидкости (Чеснокова Н.Б., Безнос О.В., Павленко Т.А., Забозлаев А.А., Павлова М.В. Антиоксидантные свойства глазных капель Мексидола и влияние их местного применения на заживление эпителиальной раны роговицы в эксперименте // РОЖ. 2012. Т.5. №1. С.88-91).

        Мексидол обладает крайне низкой токсичностью, и при введении в конъюнктивальный мешок невозможно достичь как ЛД50, так и пороговых токсических доз.

        Задачей настоящего изобретения является использование глазных капель Мексидол 2% для местного лечения ожогов глаз.

        Техническим результатом предлагаемого изобретения является снижение воспалительной реакции, ускорение заживления ожоговой раны, предупреждение развития глубоких язв роговицы и ускорение восстановления микроциркуляции после ожогов глаз.

        Технический результат достигается за счет местного введения в глаз Мексидола в виде 2% глазных капель 2-4 раза в день в течение 2 недель после ожога.

        Для исследования действия глазных капель Мексидол 2% на заживление ожоговой раны роговицы нами было проведено две серии экспериментальных исследований.

        I серия. Сравнительная оценка влияния применения глазных капель Мексидол и Эмоксипин, а также плацебо на характер течения репаративных и локальных метаболических процессов после ожога центральной области роговицы у кроликов.

        У 15 (30 глаз) кроликов моделировали дозированный щелочной ожог центральной области роговицы с помощью нанесения на роговицу кругов из ткани (010 мм), пропитанных 0,1 N NaOH, на 40 сек. При таком ожоге происходит глубокое повреждение стромы роговицы, приводящее в дальнейшем к развитию язв. Проводили сравнительную оценку влияния применения глазных капель Мексидол и Эмоксипин, а также плацебо (3 раза в день в течение 28 дней начиная с первого дня после ожога) на клиническую картину заболевания, антиокислительную активность слезной жидкости, а также содержание в ней плазминогена.

        1 группа — инстилляции Мексидола — 5 кроликов (10 глаз);

        2 группа — инстилляции Эмоксипина — 5 кроликов (10 глаз);

        3 группа — инстилляции плацебо — 5 кроликов (10 глаз);

        4 группа — интактные кролики — 3 кролика (6 глаз) для контроля влияния на биохимические показатели постоянно действующих внешних факторов.

        II серия. Сравнительная оценка влияния применения глазных капель Мексидол и Эмоксипин, а также плацебо на характер течения репаративных и локальных метаболических процессов после сочетанного ожога роговицы и конъюнктивы у кроликов.

        Во второй серии у 15 (30 глаз) кроликов тем же способом моделировали сочетанный щелочной ожог части роговицы, конъюнктивы и лимба, помещая круг из ткани так, чтобы половина его находилась на роговице, а половина на конъюнктиве. Такой ожог приводит к развитию послеожоговой ишемии конъюнктивы. Проводили сравнительную оценку влияния применения глазных капель Мексидол и Эмоксипин (3 раза в день в течение 14 дней, начиная с первого дня после ожога), а также плацебо на клиническую картину заболевания, антиокислительную активность слезной жидкости, а также содержание в ней плазминогена и метаболитов монооксида азота (нитратов и нитритов).

        1 группа — инстилляции Мексидола — 5 кроликов (10 глаз)

        2 группа — инстилляции Эмоксипина — 5 кроликов (10 глаз)

        3 группа — инсталляции плацебо — 5 кроликов (10 глаз)

        4 группа — интактные кролики- 3 кролика (6 глаз) (для контроля биохимических показателей)

        Всего задействовано 36 кроликов (72 глаза). Количество животных достаточно для проведения статистической обработки результатов.

        Оценку клинических проявлений ожоговой болезни глаз проводили на 4, 10, 14, 21 и 28 сутки после травмы путем биомикроскопии с окрашиванием 0,5% раствором флюоресцеина. Показатели выражали в условных баллах по принятой в лаборатории схеме.

        Забор слезной жидкости для биохимических исследований проводили за 1 сутки до нанесения ожога и далее на 1, 3, 7, 14, 21 и 28 сутки после травмы. Слезную жидкость отбирали утром до первой инсталляции препарата с помощью кругов из фильтровальной бумаги 05 мм, которые закладывали в нижний конъюнктивальный мешок на 5 мин. Компоненты слезы элюировали физиологическим раствором.

        Антиокислительную активность в отношении гидроксильного (АОА-ОН — ) и супероксид анион-радикалов (АОА-O2 ·- ) определяли по параметрам кинетики хемилюминеценции в модельной системе гемоглобин-перекись водорода-люминол (Гулидова О.В, Любицкий О.Б., Клебанов Г.И. и соавт. Изменение антиокислительной активности слезной жидкости при экспериментальной ожоговой болезни глаз // Бюлл. экспер. биол. и медицины. 1999. Т.128, №11. С.571-574.); активность плазминогена — спектрофотометриче-ски со специфическим субстратом (Момот А.П., Мамаев А.Н., Баркаган З.С. и соавт. Метод определения плазминогена и его диагностическое значение. // Проблемы гематологии. 1999. №1. С.17-20.); содержание нитратов и нитритов — по реакции с реагентом Грисса (Green L.C., Wagner D.A., Glogowski J. et al. Analysis of nitrate, nitrite, and [15N] nitrate in biological fluid. // Annal. Bio-chem. 1982. Vol.126. P.131-138.).

        Проведенные исследования показали следующее.

        При ожоге центральной области роговицы:

        1. Ежедневные инстилляции Мексидола в течение первых двух недель после ожоговой травмы центральной области роговицы приводят к существенному снижению, как площади, так и глубины дефекта роговицы. Применение Мексидола в течение более длительного времени снижает этот эффект и поэтому нецелесообразно. Эмоксипин в течение первой недели применения не влияет на изъязвление роговицы, а в дальнейшем приводит к расширению и углублению дефекта роговицы по сравнению с действием плацебо.

        2. Мексидол усиливает расширение перикорнеальных сосудов при ожоге, что может способствовать проникновению необходимых для репарации компонентов крови в роговицу. Эмоксипин не оказывает влияния на перикорнеальную инъекцию.

        3. Эмоксипин снижает воспаление конъюнктивы в начале применения, а Мексидол — через две недели инсталляций. Более длительное применение Мексидола ухудшает его противовоспалительное действие на конъюнктиву.

        4. Установлено увеличение антиокислительной активности (преимущественно по отношению к гидроксильным радикалам) в слезной жидкости кроликов с ожогом центральной области роговицы под влиянием инстилляции Мексидола по сравнению с плацебо. Увеличение содержания гидроксильных радикалов является одним из основных факторов повреждения тканей при окислительном стрессе, развивающемся при воспалении. Поэтому увеличение антиокислительной активности по отношению к гидроксильным радикалам можно рассматривать как одну из причин благоприятного влияния Мексидола на заживление ожоговой раны роговицы.

        5. Инстилляции Мексидола при лечении ожогов глаза, приводящих к изъязвлению роговицы, повышают содержание плазминогена в ране в течение первых 3 суток после ожога, способствуя очищению раны. Инсталляции Эмоксипина повышают содержание плазминогена в ране на 7 сутки после ожога, способствуя активизации протеолитических ферментов, разрушающих структурные белки роговицы, а следовательно усилению изъязвления ткани.

        При сочетанном ожоге роговицы и конъюнктивы:

        1. Инсталляции глазных капель Мексидол способствуют более быстрому восстановлению микроциркуляции в конъюнктиве после ее ожога. По сравнению с Эмоксипином Мексидол обладает более сильным противоишемическим действием.

        2. Инстилляции глазных капель Мексидол уменьшают степень изъязвления роговицы при ее ожоге, а инстилляции Эмоксипина увеличивают.

        3. Выявлено увеличение антиокислительной активности (преимущественно по отношению к гидроксильным радикалам) в слезной жидкости кроликов с сочетанным ожогом роговицы и конъюнктивы под влиянием инсталляций Мексидола по сравнению с применением плацебо. Эмоксипин в меньшей степени, чем Мексидол, способствовал поддержанию нормального уровня антиокислительной активности.

        4. При сочетанном ожоге роговицы, когда отмечается обширная ишемия конъюнктивы, инстилляции Мексидола приводят к увеличению содержания плазминогена в слезной жидкости, что на ранних этапах способствует очищению от некротизированных тканей. Повышение содержания плазминогена в более поздние сроки связано с усилением под влиянием Мексидола кровоснабжения в конъюнктиве.

        5. Мексидол увеличивает локальное содержание монооксида азота при ожоговой ране роговицы и конъюнктивы, чем можно объяснить его противоишемическое действие.

        Пример 1. Кролик №3. Ожог роговицы, инстилляции 2% Мексидола.

        После ожога роговицы развивается воспалительная реакция конъюнктивы век и глазного яблока, которая выражается в отеке и гиперемии конъюнктивы и появлении отделяемого, сначала серозного, затем гнойного. У кролика №3 эти признаки нарастали вплоть до 28 суток, количество отделяемого и инъекция конъюнктивы (переполнение кровью кровеносных сосудов конъюнктивы глазного яблока) снижались только после 21 суток. К 7 суткам становятся заметны новообразованные кровеносные сосуды, врастающие в роговицу со стороны лимба — происходит неоваскуляризация роговицы. Сосуды растут по направлению к центру роговицы, по мере увеличения длины густота их уменьшается. Интенсивность неоваскуляризации достигла максимума на 14 сутки (6 баллов), затем снизилась до 4 баллов. Непосредственно после ожога поверхность роговицы лишена эпителия. В течение первых 3 суток он восстанавливается, но затем вновь отторгается, и развивается сначала эрозия (эпителиальный дефект), а затем язва (стромальный дефект) роговицы. У кролика №3 интенсивность изъязвления роговицы (увеличение площади и глубины дефекта) нарастала до 21 суток (5 баллов), и к 28 суткам снижалась до 3 баллов (Фиг.1). Площадь дефекта оказалась максимальной на 21 сутки (2,5 балла), а глубина — на 14-21 сутки (2 балла).

        Как было установлено нами в ходе предыдущих исследований, при любом воспалительном процессе в глазу антиокислительная активность слезной жидкости снижается в первые же сутки и долгое время остается ниже нормы. В данном случае при инстилляциях 2% Мексидола АОА-ОН — на протяжении всех 28 суток оставалась выше нормы с подъемами на 35% на 3 и 14 сутки (Фиг.2). Отмечено 3 повышения АОА-О2 ·- : на 3 сутки (на 40%), на 14 сутки (на 30%) и на 28 сутки (на 66%) (Фиг.3).

        Отмечено повышение уровня плазминогена на 3 сутки (на 25%) с последующим постепенным снижением до нормы на 14 сутки и на 15% ниже нормы на 28 сутки (Фиг.4). Это свидетельствует об активации на ранней стадии ожоговой болезни плазмина, который в этот период способствует очищению раны от некротизированных тканей и подготовке ее к последующей регенерации. Падение уровня плазминогена после 3 суток говорит о своевременном снижении активности фермента после того, как его задача выполнена.

        Пример 2. Кролик №6. Ожог роговицы, инстилляции 1% Эмоксипина.

        Отек и гиперемия век, инъекция конъюнктивы нарастали по мере прогрессирования ожоговой болезни и сохранялись до 28 суток. Интенсивность неоваскуляризации роговицы плавно нарастала до 21 суток (4,5 балла) и далее не изменялась. Интенсивность изъязвления роговицы нарастала до 14 суток (5 баллов), после 21 суток снизилась до 3 баллов, но полного закрытия дефекта на 28 сутки не произошло (Фиг.1). Площадь дефекта была максимальной на 21 сутки (2 балла), а глубина — на 14 (2,5 балла).

        На протяжении всех 28 суток АОА-ОН — сохраняла значения, близкие к нормальным, но на 14 сутки, когда интенсивность изъязвления роговицы достигла максимума, АОА-ОН — снизилась на 40% (Фиг.2). На 3 сутки после ожога отмечен подъем АОА-O2 ·- на 55%, затем она снизилась до значений ниже нормы и превысила нормальный уровень только на 28 сутки (Фиг.3).

        Наблюдалось два подъема уровня плазминогена: на 7 сутки (на 31%), и на 28 сутки (на 21%) (Фиг.4). Увеличение активности плазмина в период, когда должна происходить регенерация стромы роговицы, приводит к разрушению белков стромы и развитию глубоких язв, что мы и наблюдали на 14 сутки после ожога.

        Пример 3. Кролик №11. Ожог роговицы, инстилляции плацебо.

        Признаки воспаления конъюнктивы — отек и гиперемия век были ярко выражены, нарастали вплоть до 28 суток с максимумом на 14 сутки. До 28 суток отмечалось обильное гнойное отделяемое. На 14 сутки приходилась максимальная интенсивность неоваскуляризации (5,5 баллов). Интенсивность изъязвления также была максимальна на 14-21 сутки (4 балла), далее незначительно снижалась (3 балла) (Фиг.1). Площадь дефекта была наибольшей на 14 сутки (2 балла), глубина — на 21 сутки (2 балла).

        АОА-ОН — на протяжении всех 28 суток оставалась ниже нормы на 15-20%, что характерно для воспалительного процесса в переднем отделе глаза в отсутствии медикаментозной коррекции (Фиг.2). АОА-О2 ·- повышалась на 30% на 3 сутки, затем снижалась на 7, а после 7 суток постепенно увеличивалась и на 28 сутки превысила норму на 140% (Фиг.3).

        Наблюдалось два небольших подъема активности плазминогена на 1 (на 18%) и 7 (на 14%) сутки (Фиг.4).

        Пример 4. Кролик №20. Сочетанный ожог роговицы и конъюнктивы, инстилляции 2% Мексидола.

        Признаки воспаления конъюнктивы были максимально выражены на 3-8 сутки после ожога и полностью исчезли к 21 суткам. Инъекция конъюнктивы и отек роговицы также полностью исчезли к 21 суткам. Кровообращение в зоне лимба восстановилось на 14 сутки. Площадь и глубина дефекта роговицы при таком ожоге обычно невелики. У кролика №20 они достигали максимума на 10 сутки (1 балл), на 21 сутки дефект полностью закрылся. Сразу после ожога часть конъюнктивы, на которой находилась пропитанная щелочью ткань, становится абсолютно белой — это зона послеожоговой ишемии. Далее она постепенно сокращается за счет врастающих в нее сосудов со стороны неповрежденной конъюнктивы. У кролика №20 площадь зоны ишемии к 10 суткам уменьшилась с 3 до 0,5 балла, к 14 суткам кровообращение восстановилось полностью (Фиг.5).

        АОА-ОН — с 1 по 14 сутки была ниже нормы на 25-30%, но на 21-28 сутки превышала норму на 16-18% (Фиг.6). АОА-O2 ·- , напротив, постоянно была выше нормы и только на 14 сутки снижалась до нормального уровня. На 28 сутки превышение достигло 40% (Фиг.7).

        Уровень плазминогена значительно повышался дважды: на 1 сутки в 2, 3 раза и на 21 сутки в 2,7 раз (Фиг.8).

        Содержание нитритов и нитратов возрастало с 1 до 7 суток до 140% от нормы, затем на 14 сутки снизилось, но на 21 снова превысило норму на 25% (Фиг.9). Высокое содержание в слезе метаболитов монооксида азота свидетельствует об активном росте сосудов и восстановлении микроциркуляции в зоне ожога.

        Пример 5. Кролик №26. Сочетанный ожог роговицы и конъюнктивы, инстилляции 1% Эмоксипина.

        Максимальная выраженность воспаления конъюнктивы наблюдалась с 1 по 10 сутки и далее постепенно уменьшалась. На 28 сутки признаков воспаления не было. Инъекция конъюнктивы была максимальна на 4 сутки (3 балла), затем быстро спадала и на 21 сутки исчезла полностью. Отек роговицы также полностью исчез к 21 суткам. Кровообращение в зоне лимба восстановилось на 14 сутки. Максимальные площадь и глубина дефекта роговицы наблюдались на 10 сутки (1 балл), на 21 сутки дефект полностью закрылся. Площадь зоны ишемии за промежуток с 4 до 10 суток уменьшилась с 3 до 1,5 баллов, к 14 суткам до 0,5 баллов, и на 21 сутки кровообращение в поврежденном участке конъюнктивы восстановилось полностью (Фиг.5).

        АОА-ОН — в течение всего эксперимента была на 20-30% ниже нормы, на 14 сутки снижение достигло 50%, на 28 сутки показатель вернулся к норме (Фиг.6). АОА-О2 ·- в течение первых 7 суток незначительно превышал норму, на 14 сутки опустился на 15% ниже нормы, а к 28 суткам вновь превышал норму на 23% (Фиг.7).

        Уровень плазминогена повышался на 20% на 1 сутки, затем сильно снижался и только на 21 сутки вновь оказывался выше нормы на 34% (Фиг.8).

        Уровень метаболитов оксида азота в слезе повышался на 20% на 3 сутки, затем снижался и на 21-28 сутки вновь превышал норму на 45-50% (Фиг.9).

        Пример 6. Кролик №32. Сочетанный ожог роговицы и конъюнктивы, инстилляции плацебо.

        Воспаление конъюнктивы было наиболее выражено на 8 сутки, отек и гиперемия век сохранялись на 28 сутки. Отек роговицы полностью исчез только на 28 сутки. Кровообращение в зоне лимба восстановилось на 28 сутки. Площадь и глубина дефекта роговицы максимальны на 10 сутки (1 балл), на 21 сутки дефект полностью закрылся. Площадь зоны ишемии на 14 сутки составляла 0,5 балла, на 21 сутки кровообращение восстановилось полностью (Фиг.5).

        АОА-ОН — и на протяжении 21 суток сохраняла очень низкие значения — в 3 раза ниже нормы, а к 28 суткам вернулась к норме (Фиг.6). АОА-О2 ·- в течение первых двух недель была выше нормы на 16-17%, на 14 сутки снизилась до нормы, а к 28 вновь превысила норму почти на 40% (Фиг.7).

        Уровень плазминогена в слезе повышался на 40% на 1 сутки, затем снижался, а максимальное его увеличение отмечено на 14 сутки (в 2 раза) (Фиг.8).

        Уровень нитратов с первых же суток был ниже нормы (на 7 сутки — на 40%) и только на 21-28 сутки превысил норму на 20-35% (Фиг.9).

        Таким образом, применение 2% Мексидола в течение первых двух недель после ожогов роговицы и конъюнктивы способствует снижению интенсивности воспалительной реакции, уменьшению площади и глубины дефекта роговицы, ускорению его заживления, а при ожоге конъюнктивы — более быстрому восстановлению микроциркуляции в зоне послеожоговой ишемии. Изучение локальных метаболических процессов показало, что местное применение 2% Мексидола в виде глазных капель увеличивает антиокислительную активность слезы, способствует быстрому очищению раны за счет активации протеолиза в ранние сроки после травмы, усиливает образование универсального биорегулятора оксида азота, являющегося сильным вазодилятатором. Выбранный в качестве ближайшего аналога Эмоксипин подобными свойствами не обладает, что свидетельствует о большей эффективности Мексидола при лечении ожогов глаз.

        Консультирует врач Борис Черемицын.

        Почему случается так, что вроде бы без видимых на то причин белок глазного яблока вдруг становится красным? Иногда это совсем небольшое пятнышко, а иногда кровяное пятно может покрывать полностью всю склеру. Главная причина – это хрупкость мельчайших сосудов — капилляров, которые пронизывают все ткани глаза. Причина же хрупкости сосудов в глазу находится гораздо глубже и является одним из симптомов серьезных болезней:

        Артериальная гипертензия. Нарушению целостности сосудов способствует резкий скачок давления при гипертоническом кризе. Сосуды не выдерживают резкого давления и лопаются. И это хорошо, что сосудик разорвался под конъюнктивой, а не где-то в другом органе.

        Сахарный диабет. Одним из его проявлений является диабетическая ангиопатия. Повышенный сахар в крови ведет к разрушению сосудов. Заболевание проявляется не только кровоизлияниями в глаз, но и заметным ухудшением зрения. Сосуды могут повреждаться без видимых причин, даже от небольшой физической нагрузки.

        Инфекционные заболевания, сопровождающиеся лихорадкой или обильной рвотой (пищевые токсикоинфекции, ротавирусная инфекция, дизентерия и т. д.).

        Заболевания глаз – конъюнктивит, кератит, при которых в сочетании с обильным слезотечением наблюдаются кровоизлияния в глаз.

        Травмы глаз – механическое резкое воздействие на глазное яблоко ведет к разрыву кровеносных сосудов. Сюда можно добавить и травмы, связанные с операциями на глазах.

        Болезни крови, причиной которых является плохая свертываемость.

        Недостаток витаминов С, А, рутина ведет к снижению эластичности стенок сосудов и их разрыву.

        Опухоли, располагающиеся рядом с глазом, способствуют сдавливанию и деформации сосуда, вследствие чего сосуд лопается.

        Алкоголизм – прием алкоголя в больших количествах ведет сначала к резкому расширению, а затем быстрому сужению сосудов, которые не выдерживают.

        Другими причинами может быть длительный прием некоторых лекарств, побочным эффектом которых может стать кровотечение. А еще изменение внутричерепного давления, которое случается у людей с повышенной метеочувствительностью.

        И это еще не все. Сосуды могут лопнуть от зрительного перенапряжения, когда долго работают за компьютером, читают текст с мелким шрифтом, при ручной кропотливой работе. Подобное может случиться у людей при повышенной физической нагрузке, например, при поднятии тяжестей, у женщин при родах во время потуг, при сильном кашле. Даже посещение жаркой бани или сауны может привести к разрыву капилляров.

        Когда идти к врачу?

        Если лопнул сосуд на одном глазу и кровоизлияние небольшое, то особых тревог это не должно вызывать. Краснота со временем сама по себе исчезнет. Но если кровоизлияние довольное обширное, захватывает большую часть глазного белка, появилось одновременно на обоих глазах и продолжается более недели, то верный повод идти на прием к офтальмологу.

        Тревогу стоит бить, если ко всем перечисленным признакам имеется боль в глазном яблоке или другие необычные ощущения. Подобные кровоизлияния могут привести к частичной или полной потере зрения.

        Как проявляются кровоизлияния в разные участки глаза

        В сетчатку глаза. Такая локализация представляет опасность и сопровождается ухудшением зрения и некоторым дискомфортом. Если не обращать внимания на эти симптомы, со временем это может привести к резкой потере зрения.

        В глазницу. Основным симптомом может быть некоторое выпячивание глазного яблока из-за давления скопившейся крови в глазнице. На склере видны небольшие геморрагические пятнышки, наблюдается трудность в движении глаза в стороны, ухудшения зрения. Чаще всего это случается из-за травмы или болезни крови.

        В стекловидное тело глаза. Проявляется появлением бугорка на глазу. Симптом неблагоприятный, если в глазах появляются яркие вспышки, ухудшается зрение. В подобной ситуации необходима экстренная помощь, так как возможно отслоение сетчатки и полная потеря зрения.

        В переднюю камеру. Это гифема. В передней камере глаза виден сгусток крови, он подвижный, изменяет месторасположение в зависимости от положения тела. Это не так страшно, но если сгусток не исчез за неделю, то обязателен осмотр и консультация врача.

        Кровоизлияние в глазу — что делать?

        Если кроме красноты в глазу, нет никаких других симптомов, то можно воспользоваться глазными каплями, которые вам порекомендует врач. Глазные капли обладают сосудосуживающим и противоотечным действием. Некоторые помогают при аллергии, вызванной действием внешних раздражающих факторов (пыль, дым, некачественная косметика, хлорированная вода, контактные линзы). Препараты с таурином помогают не только при кровоизлиянии в глаз, но и стимулируют обменные, регенеративные и энергетические процессы, ускоряют заживление повреждений на роговице. Другие препараты обладают способностью восстанавливать поврежденные сосуды глаза, увеличивают их прочность и, снижая проницаемость стенок сосудов, улучшают кровообращение и кислородное питание, способствуют быстрейшему рассасыванию гематом на глазном яблоке.

        Консультация профильного специалиста (офтальмолога) даст вам больший результат и будет более эффективна.

        Что нельзя делать при кровоизлиянии в глаз

        Тереть глаза. Так можете занесьти инфекцию, и разовьется еще, чего доброго, гнойный конъюнктивит.

        Применять сосудосуживающие глазные капли, они не принесут необходимого эффекта, а кроме того, негативно скажутся на самом глазном яблоке.

        Не рекомендуется промывать глаза настоем чая, воспаление не снимется, а конъюнктивит может развиться.

        Н е трогайте грязными руками глаза, особенно перед закапыванием капель.

        Больше спите и отдыхайте, при закрытых глазах процесс рассасывания и восстановления проходит быстрее, меньше раздражающих факторов действует на глаза. Особенно это важно, когда лопаются сосудики в глазах от перенапряжения.

        Профилактика кровоизлияний в глаза

        Если лопнул сосуд в глазу, то это, возможно, верный признак нехватки в организме витамина С – аскорбиновой кислоты. Значит, необходимо пересмотреть рацион питания и больше добавлять в пищу продуктов, богатых витамином С – цитрусовые, лук, чеснок, отвар шиповника, черная смородина, болгарский перец, все виды капусты и квашеную капусту, шпинат и т. д.

        Необходимо следить за своим артериальным давлением и вовремя принимать гапотензивные препараты.

        С профилактической целью регулярно проходить диспансеризацию для выявления возможных заболеваний.

        Не рекомендуется наклонять низко голову во избежание прилива крови к глазам.

        Придерживаться здорового образа жизни.

        Дозировать время работы за компьютером и не переутомляться.

        Избегать травм глаза, соблюдая технику безопасности в быту и на работе.

        Читайте так же:  Кролик помощник